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 전체 > Molecular Biology-DNA > Gene Cloning
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질문 pLentivirus 을 이용한 target gene insertion 질문드립니다
알대학원생7777(대학원생)  | 03.25 18:52

안녕하세요 바이오 고수님들께 궁금한 답을 찾고자 이렇게 글을 쓰게 되었습니다!

 

저희 실험실에서는 지금까지 CRISPR/Cas9 system을 이용해서 여러가지 Knock-out cell line 제작을 했었습니다.

이 때 plenti CRISPR cas9 ver2 벡터를 이용했고, 만든 벡터를 (sgRNA 넣어준 벡터)

 Electroporation방법으로 세포 내에 벡터를 넣어주고 puromycin selection을 해서 K/O

cell line을 제작을 하는 방법을 사용했습니다. 

1. 궁금한 점은 electroporation 방법으로 세포 내로 pLenti CRISPR cas9 plasmin 1개만 넣어주었는데 이 벡터가 어떻게 chromosome 내로 insertion이 될 수 있는지?

(plenti CRISPR cas9 plasmid vector 내에 PuroR sequnece가 있음. 5'LTR, 3'LTR 사이에 gene이 있다고 해도 Integrase가 있어야지 세포 내로 Integration이 될 수 있는 것이 아닌지? )

(LTR에 integrase binding 서열이 있는 것이지 integrase 가 있어야지만 integration 될 수 있는 것이 아닌지?)

 

2. 이러한 물음을 가지게 된 계기가 ..

pCW57-GFP-2A-MCS 벡터 (All-in-one doxycycline inducible lentiviral vector for expression of one gene in combination with turbo GFP using the P2A self-cleaving peptide.) 를 이용해서 Target gene을 Inducible 하게 발현하는 세포를 만들고자 하였는데,

이 벡터1개를 세포 내에 Electroporation해서 넣어 주었는데 세포가 잘 만들어지지 않아서 논문들을 찾아보니 대부분 Virus infection 방법을 이용해서 (packaging vector와 같이 HEK293T에 먼저 transfection) 세포를 만드는 것을 확인 하 였습니다.

K/O cell line을 만들 때 plenti CRISPR cas9 벡터 1개만 electroporation해도 cell line이 잘 만들어졌기 때문에 pCW57-GFP-2A-MCS 벡터도 동일하게 넣어준 것인데 혹시 문제점이 있는 것인지 궁금합니다..!

답변 주시면 정말 감사할 것 같습니다..

대학원생 분들 모두 화이팅 입니다! 

감사합니다.

 

 

#pCW57-GFP-2A-MCS
 
#lentivirus
 
#integrase
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답변 본 정보는 네티즌에 의해 작성된 정보로, 내용 중 중요하다고 생각되는 부분은 추가적인 사실 확인을 반드시 하시길 바랍니다.
개구리실험은안될때가더많아  |  03.27 14:25  
채택답변: 질문자가 채택한 답변입니다.

1. chromosome insertion을 확인하셨나요?

lentivirus vector는 자체만으로 integration을 할 수 있는 능력이 없습니다.

허나 vector의 디자인 상 보통은 promoter-gene의 형태는 그대로이기 때문에 transfection을 통하여 transient expression이 가능합니다.

선생님께서 K/O cell line을 만드실 때 이처럼 transient한 expression을 통하여 Cas9, sgRNA 를 발현시킨 것으로 사료됩니다.

Cas9과 sgRNA는 transient하게 발현되어도 genome에 영향을 주어서 영구히 K/O된 cell이 되긴 하였겠지요. 이는 Cas9과 sgRNA의 genome integration과는 무관한 사항입니다.

F.Zhang 팀의 PX459와 같은 expression용 Cas9 vector들이 분명 존재하는데 왜 lentivirus vector를 갖고 transient expression을 하셨는지는 이해가 가질 않네요...

 

2. 위와 마찬가지로 lentivirus vector는 단순히 transfection만으로 integration이 불가능하고 self replicating episomal vector와 같이 오랜기간 생존할 수 있는 plasmid가 아닙니다.

따라서 transfection 이후 초반에는 selection도 잘 되고 gene 및 GFP가 잘 발현하겠으나 시간이 지날 수록 transgene들이 발현이 떨어질 것이므로 stable cell line을 만들 수 없을 것입니다.

 

추천드리는 바로는 expression용 vector와 lentivirus vector를 그 용법에 맞게 쓰시고 (LMO법상으로도 viral vector는 LMO입니다)

stable cell line을 만드시려면 lentivirus vector를 packaging vector와 함께 293에 transfection하여 lentivirus particle을 만들어 이를 infection하세요.

알대학원생7777  |  03.28 13:32  

답변 정말 감사드립니다.. 많은 도움이 되었습니다 ㅠㅠ

 

혹시 한가지만 더 여쭈어 보고 싶은데

 

저희가 pLenti CRISPR ver2 벡터로 electroporation해서 K/O cell line 만들었고, Western  blot으로도 K/O 이 잘 된 것을 확인을 했습니다.

 

이 세포들은 Puromycin resistant 한데

Cas9 과 Puro가 integration이 되지 않고 tranisent하게 발현되는 것이라면,

이 세포들이 계속 Puromycin 저항성을 갖고 있는데 세포 자체가 계속 Puromycin media에서 culture를 하였기 때문에 Puromycin 저항성을 가지게 된 것이라고 생각하면 될까요?

 

감사합니다.

개구리실험은안될때가더많아  |  03.28 15:09  

대상 셀이 어떤 것이었고 puro는 농도를 얼마를 처리했을까요?

사실 대조군으로는 sgRNA cloning 하지 않은 vector를 electroporation 한 뒤 같은 농도의 puro를 처리한 그룹이 있어야만 확실히 알 수 있겠습니다만

낮은농도로 오래 처리한 경우 낮은농도의 puro에서는 살 수 있는 세포들만 살아남아있을 가능성이 높다고 생각됩니다.

tranient expression인 경우 세포마다 다르지만 평균 puromycin 1ug/ml 근방의 농도로 처리하였을때 2~3일 내로 selection이 완료되었습니다.

 

알대학원생7777  |  03.28 15:25  

HepG2 (hepatocellular carcinoma) 세포를 사용했고, 

Puromycin 1ug/ml 로 3주 정도 처리 하였습니다.

 

Puromycin 2ug/ml 으로 처리 시, 세포가 굉장히 많이 죽어서 남아있는 세포가 거의 없어

Puromycin 1ug/ml로 농도를 변경하여서 진행을 했었습니다.

(최종 K/O 확인 한 세포들은 1ug/ml로 Puromycin selection 진행 했음)

 

선생님 말씀을 들어보니

낮은 농도로 3주 정도 처리하면서 세포가 Puromycin resistant 해 진 것일 수도 있다는 생각이 들었습니다..

 

감사합니다..ㅠㅠ

 

 

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