[DEBUG-WINDOW 처리영역 보기]
즐겨찾기  |  뉴스레터  |  오늘의 정보 회원가입   로그인
BRIC홈 실험
이엔셀
배너광고안내
이전
다음
스폰서배너광고 안내  배너1 배너2 배너3 배너4
BioLab 장재봉 교수
전체보기 안전점검 LABox
 카테고리: 전체 > Laboratory Animals > Histology/Pathology
Mol. Biol.-DNA Mol. Biol.-RNA Mol. Biol.-Protein Immunology
Cell Biology Microbiology Plant Biology Laboratory Animals
Omics Chemical biology Bioinformatics Laboratory Equipments
Buffer/Reagent Bioethics Etc.
카테고리 전체보기펼치기
질문/투표/프로토콜 등록
Q. 마우스 liver 조직에서 H&E를 하는데 일부 핵들이 반점처럼 검은색으로 염색이 됩니다. 해결방법 아시는 분 계신가요? 첨부파일
간 조직을 H&E 염색을 하는데요 아무리 프로토콜을 수정해 보아도 개선이 되질 않네요일부 핵들이 검은색으로 염색이 됩니다.파라핀제거위한 xylene 처리 시간도 늘려보고 60도에 슬라이드 1시간 처리도 해보고hematoxylene (필터 후 사용) 염색 후 washing 시간 조절 (강하게)감별 탁색 acid alcohol 농도 조절  bluing 조절 해볼만한 것 들은 다 해봤습니다.   감별 탈색 과정을 넣지 않으면 검은 점들은 생기지 않은데요.전체적으로 진한 보라색으로 염색이 됩니다.감별탈색 과정을 넣어서 세포질은 핑크 핵은 파란색으로 이미지를 얻고 싶은데 일부 핵들이 검은색으로 염색이 됩니다.혹시 해결방법 아시는분 없으신가요?조직에 구멍이 있는것들은 조직 특성상 그런것 입니다.컨트롤 조직에서도 비슷한  검은 점들이 나타납니다.
회원작성글 조직염색초보  |  2015.07.09
Q. crytome을 사용하기 위한 OCT 블럭만들때 은박지 말고 플라스틱 틀 있잖습니까?
그 플라스틱 틀을 뭐라고 부르죠?어디서 판매 합니까? 예전부터 있던것 사용했는데 새로 사고 싶어서요.모지라는것은 은박지로 사용하는데 한계가 있습니다.아시는분 답변좀 주셔요
OCT  |  2015.05.22
Q. pfa어디다 녹이시나요?
안녕하세요~PFA 파우더를 녹이려고 하는데요. DW에 녹인뒤 pH를 맞추시나요? 아니면 PBS에 녹이시고 pH는 안맞추시는가요..? 그리고 잘 녹는 지요? DW에서 녹였는데 참안녹더라고요. 온도를 높게 하니까 녹던데...아무튼 PBS or DW? 궁금합니다.
pfa  |  2015.04.27
Q. 동물
같은 조직내 다른 장소를 찍으면
ㅇㅇ  |  2015.04.20
Q. cytotoxicity in vitro시에 약물의 농도에 대해서
안녕하세요. 독성을 in vitro로 알아보려고 하는데요. CCK-8을 사용하려고 합니다. 처음에 셀을 WELL에 깔고, 1.25 uM, 2.5 uM, 5uM, 10uM ... 80uM까지 다른 농도의 약물을 주려고 합니다. 만약에 1.25 uM에서 분자량으로 계산해서 약 농도가 0.50 ug /ml나온다고 하면 2.5uM에서는 1 ug/ml씩 두배로 커지는데요. 이런 식험을 한 약물당 기본적으로 3번 혹은 이상은 할텐데. 약의 농도 조절을 쉽게 어떻게 쉽게 해야할까요. 그때 마다 서로 다른 약 농도를 만드는건 아닐 것 같은데... 위에서는 쉬운 예를 사용했지만, 예를 들어 0.4352 ug/ml (1.25uM) 같은 농도를 만들어야  할때는 어떤식으로 맞는 농도를 만들어야 하나요? 도와주세요~ 
회원작성글 사과상자  |  2015.02.11
Q. IHC시 dehydration이 안되요 ㅜ_ㅜ
brain section을 immunohistochemistry시 DAB 발색 후 0.1M sodium phosphate buffer로 washing 3번 해준 뒤 dehydration과정을 진행하는데요 70% EtOH > 80% EtOH > 90% EtOH > 100% EtOH > 100% EtOH > xylene 과정으로 각각 3min씩 진행합니다. 그런데 어느순간부터 조직이 dehydration이 안되고있어요 그래서 구글에서 찾아보니 어떤 lab에서는 25% 50% 60% EtOH 과정도 진행한다기에 50% EtOH 과정을 추가시켜서 각각 15min까지도 진행해보았는데요 여전히 안되요 ㅜ_ㅜ 혹시 buffer가 문제인가 싶어 NaPB, Washing, EtOH까지 freshly made해서 사용해보았는데도 여전히 안되고있습니다 혹시 EtOH dehydration말고 다른 방법이 있다거나 저처럼 IHC시 dehydration안된 경험 있으신분들 조언 좀 부탁드릴께요 ㅜ_ㅜ
회원작성글 han★  |  2015.02.03
Q. mice 간 조직 ADH, ALDH 원심분리 조건
보통 가장높은 원심분리 조건이 몇 g 로 상등액과 필렛을 나누나요?실험실에 있는 원심분리기 조건이 e-tube 사용시 25,000g 정도가 최고입니다.제가 찾아본 논문을 확인해본 결과로는 못해도 40,000 ~ 100,000g 정도인데sigma aldrich의 조건에서는 13,000g 로 하더군요혹시 25,000g 이하로 하는 reference 있으시면 제목이라도 알려주심 감사하겠습니다.
min  |  2015.01.31
Q. 마우스 피하주사 부위에 출혈이 발견됩니다
메틸염화수은을 생리식염수에 녹인 것을 등쪽 목덜미에 피하주사하고 있습니다.첫 번째 투여 땐 문제가 없었고, 그 후에도 행동 자체에 이상이 없었습니다. 오늘이 두 번째 투여하는 날이었는데 목덜미에 이상하게 혹 비슷한 것이 잡혔습니다.한 마리만 그러면 투여하다가 실수했나 하겠는데, 수은 투여군에서 전부 그런 현상이 나타나네요. 잡아보면 단단한 느낌도 들고, 주사바늘이 딱 피부까지는 뚫고 들어가지만 그 이상 집어넣기가 힘듭니다. 그 부위를 건드리면 마우스가 아파하는 느낌도 들어요.그리고 주사바늘이 뚫고 들어간 부위에서 피가 흐릅니다. 털이 덮여 있을 땐 몰랐는데, 털을 걷어보니 목덜미 쪽-그러니까 일주일 전에 수은을 투여했던 부분이 검붉고 조금 부어올라 있는 게, 아무래도 피부 밑에서 출혈이 발생한 것 같긴 한데 기존 논문들에서 별다른 이야기를 찾을 수 없네요. 투여 도중에 무슨 일이 있었는지 까지는 써 두질 않아서;혹시 수은 관련 실험해보신 분 계시면 답변 부탁드립니다 ㅠㅠ
수은  |  2014.12.26
Q. 마우스 면역체계 이용이 가능한가요?
인간항체를 이용하여 항암 동물 실험에서 종양 샘플을 얻었습니다.종양 샘플을 이용하여 종양 조직 내의 mRNA 의 변화를 측정하여면역체계의 변화를 qPCR로 확인 하려고 가설을 세웠는데요 여기서 질문이 있어요~!우선 인간 항체를 이용해서 인간유래 세포주로 형성되는 종양의 억제 효과를 확인! 하였지만이는 인간 항체로 인한 단순 효과로 보는 것이 맞는 건가요?아니면 인간 항체로 인한 생쥐의 면역체계를 이용이 가능하여 일부분이 라도 가능하여종양의 억제 효과가 있는것이라는 가설이 맞을 수 있을 까요?처리 물질: 인간 항체종양 기원: 인간 유래이식 동물: B cell, NK cell의 활성을 가진 BALB/C 누드 마우스관련 논문도 없고 해서 질문 드려 봅니다 ~~
회원작성글 ralaman  |  2014.12.04
Q. tissue homogenization 관련하여 질문있습니다.
마우스에 미정맥으로 박테리아 감염시킨 후에 장기 적출하였습니다.적출한 장기(Liver and Spleen)에서 CFU 값을 구하기 위해 먼저 단계로tissue homogenization을 하려고 하는데 어떻게 해야 하나요?예전에 virus실험의 경우 Q사 제품으로 bead를 넣고 갈아서 진행했었는데이번에는 박테리아여서 같은 방법으로하면 박테리아가 죽어버릴까 걱정이 됩니다.고수님들의 답변부탁드리겠습니다. 
코돈  |  2014.11.20
Q. 당뇨 mouse에서 췌장, 간, 신장 H&E염색좀 도와주세요
안녕하세요당뇨 유도한 mouse에서 췌장(이자), 간, 신장 H&E staining을 해야하는데신장은 사구체가 잘 보일때까지 하면 될거같은데 간은 어떤식으로 봐야할지 모르겠어서요..ㅜㅜ당뇨로 인한 손상이나 염증등을 관찰하려고 하는데췌장(이자)는 사실 정확히 분리했는지도 약간은 걱정이고,시간이 없어서 우선 급한대로 paraffin embedding 했는데방향도 저게 맞는지 모르겠고 ... 랑게르 한스 섬 쪽을 보는게 맞는건가요? 혹시 어떤식으로 나타난 곳을 봐야하는지 좀 도와주세요 ㅠㅠ도움 청할곳이 없어서 이렇게 글 올립니다 ㅜㅜ구글링은 해봤는데 제가 잘 못찾는건지 이상한 것만 나와서 embedding과 그 이후에 대해서는 잘 못찾았습니다 ㅜㅜ 도와주세요
회원작성글 도와주세요  |  2014.11.13
Q. 왜 설치류의 뇌에는 포르말린계 고정액들이 통과를 못하나요?
파라핀이 어쩌구하는것같은데 무슨 소린지 모르겠어여
회원작성글 김손  |  2014.11.03
Q. 조직 section 에서 auto-fluorescence 에 대해 질문 드립니다.
실험 고수님들께 질문 드립니다. 현재, mice 의 liver 나 muscle, testis 등에서 형광을 확인하는 실험을 하고 있습니다. 일단, 간이로 확인하는 것이라서, 조직을 Harvest 한 후에, 바로 OCT 에 넣어서, -70 도씨에 넣은 후에 Section 해서 보고 있었습니다. 그런데, 제가 해 보니, auto-fluorescence 가 너무 심한 것이었습니다. 그래서, 형광 자체를 확인할 수가 없을 것 같습니다. auto F 가 생기는 원인이나, 이것을 줄일 수 있는 방법에 대해실험 고수님들의 도움을 부탁 드립니다 !!감사합니다.
실험 초보  |  2014.09.28
Q. 지방조직 파라핀 몰딩
혹시 지방조직을 파라핀 몰딩해보신분 계신가요?하셨다면 디하이드레이션 방법좀 알려주세요ㅠㅠ
회원작성글 파라핀  |  2014.08.28
Q. Collagen에 대해 공부하고 있습니다. 첨부파일
이곳에 자료해석을 질문해도 되는지 모르겠습니다..Collagen에 대해 공부하다 masson-trichrome staining을 보았는데요,collagen은 파랗게 염색된다고 알고있습니다.첨부해드린 사진을 보면 UVB에 의해 dermis, epidermis 전체적으로 파랗게 염색되었는데요,이건 어떻게 해석해야 하는지요? 파랗게 보이는 부분이 많으니 collagen이 많아진 것인가요?UVB에 의해 collagen fiber가 파괴되어 이렇게 된 것인가요?아직 더 공부해야 할 것 같습니다.자료 해석에 대한 조언 부탁드립니다...
회원작성글 네잎크로바  |  2014.07.15
Q. CIA 실험 후
CIA 실험 후, mouse 조직을 cartilage, bone 의 inflammation 을 H&E 로 확인하면서 IHC 로 몇가지 molecule 을 확인하려고 합니다.실험실에 slide preparation 을 할 수 있는 시설이 구비되어 있지 않아, 위탁하려고 하는데,믿고 맡길 수 있는 곳을 추천부탁드립니다.감사합니다.
수습자  |  2014.06.30
이전  01 02 03 04 05 06 07 8 09 10  다음
실험 회원 등급이란?
실험Q&A 회원등급안내
위로가기
실험 홈  |  실험FAQ
 |  BRIC소개  |  이용안내  |  이용약관  |  개인정보처리방침  |  이메일무단수집거부
Copyright © BRIC. All rights reserved.  |  문의
트위터 트위터    페이스북 페이스북   유튜브 유튜브    RSS서비스 RSS
필코리아테크놀로지 광고