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[우당탕탕 석사 적응기] 석사 1학기 - 새로운 환경, 그리고 후회
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 카테고리: 전체 > Molecular Biology-DNA > etc.
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Q. plasmid 제한효소 처리 질문드립니다! 첨부파일
제한효소 처리 후 전기영동 결과를 첨부해두었습니다. complete sequence 분석이 완료된 균주의 plasmid 확인 중인데요   NEB cutter로 분석된 plasmid 서열을 넣어 1-cut 제한효소 확인 -> prep 후 제한효소 각각 따로 처리하여 전기영동 결과 확인 -> 결과) lane 2 : A, B 모두 1-cut이나 B cutting X             lane 3 : A만 1-cut이나 cutting X             lane 4 : B만 1-cut이나 cutting X, A cutting O   위와 같이 실험 진행했고 결과를 분석했는데요.. 업체에서 분석 중 문제가 있었던걸까요? 아니면 제한효소 처리를 제가 잘 못 한걸까요ㅠ 업체측에 문의했을때는 이상이 없다고만 하셔서 답답하여 질문올립니다ㅠ   추가로 제한효소 처리 후 항상 밴드가 더 흐릿하게 퍼지는데 원인이 뭘까요..? 처리하지 않고 띄웠을 때는 또렷하게 나오는데 항상 처리 후에는 약간 흐릿하게 번져서 나옵니다   미리 감사인사드립니다!
회원작성글 ㅇㅋㅇㅋ  |  2021.12.20
Q. DNA methylation array
DNA methylation 분석을 하고 있는데 실험적으로 이해가 안가는 부분이 있습니다.   전체적인 dna methylation 실험 알수 있을까요,,   infinium1,2를 사용한다고 하는데 이 과정이 잘 이해가 안가네요 ㅜ
회원작성글 lsy6949  |  2021.12.17
Q. amino acid structure analysis program
histone point mutant를 이용하여 실험을 하고 있는데,  histone point mutant일 때, WT과 비교해서 DNA와의 binding이 어떻게 변하는지 알고싶습니다. 혹시 그런 구조를 분석할 수 있는 program이 없을까요?
회원작성글 tresf1588  |  2021.12.08
Q. 전기영동 실험 관련 질문
생명과학에 관심이 많은 고등학생입니다! 1. 전기영동 실험시 loading dye 대신 아세트 올세인을 사용하지 않는 이유가 무엇인가요? (DNA염색약으로) 2. 전기영동 버퍼로 HCl로 PH를 맞추면 안 된다는 이야기가 있는데 뭐 열이 난다 등등 그 이유가 뭔가요?? 자세한 설명 부탁드립니다 ㅠㅠ 제 서치 능력으로는 답을 찾을 수가 없어서요ㅠㅠ
회원작성글 ㅡㅠㅠ  |  2021.12.05
투표완료 dna칩에서 DNA prove 대신 RNA virus의 염기서열을 활용한 prove를 이용할 수 있을까요?
진행 2021.12.02~12.06  |  참여자 6명
Q. DNA prove 대신 RNA virus의 염기서열을 활용한 prove를 이용할 수 있을까요?
제목 그대로 입니다. DNA칩에서 DNA prove 대신 약 100~1000bp RNA virus의 염기서열을 활용한 prove를 이용할 수 있을까요???
회원작성글 yennii  |  2021.12.02
Q. PDRN 순도, 수율에 대한 데이터 의뢰할 수있는 기관이 있나요
제목 그대로 입니다. PDRN 순도, 수율에 대한 데이터 의뢰할 수있는 기관이 있을까요..?  알려주신다면 감사하겠습니다. 
회원작성글 히히하헤호  |  2021.11.24
Q. 전기영동 후 밴드 사이즈
보통 전기영동 결과에 밴드 사이즈를 35bp이런식으로 적는데  해당 밴드의 사이즈를 어떻게 알 수 있나요..? ladder와 비교해서 적으면 되는건가요?? 아니면 시퀀싱 결과로 알 수 있나요???
회원작성글 아웃풋  |  2021.11.22
Q. 컴셀
균주 컴셀 만들시 워시과정에서 사용하는 용액과 최종 분주할때 사용하는용액(최종과정) 달라도 상관없나요?
회원작성글 승보  |  2021.11.22
Q. midi prep 고수님들의 도움이 필요합니다 첨부파일
Midi prep 과정 중 Isopropanol을 넣은후 centri를 돌린후 확인을 하였는데, 원래 항상 약간 투명하고 엄청 작은 pellet이 바닥에 붙어있었는데 그것보다 훨씬 크고 하얀 pellet이 생겨버렸습니다 ㅠㅠ 혹시 염농도가 너무 높거나, 무슨 문제가 생겨서 그런게 아닐지 궁금하여 글 올립니다 에탄올로 파이펫팅 해보면 가루처럼 파사삭하고 부서져요 ㅠㅠ 고수님들의 도움이 필요합니다
회원작성글 곰브리치  |  2021.11.20
Q. 게시자의 요청에 의해 삭제된 질문입니다.
    해당 게시물은 게시자의 요청에 의해 삭제된 질문입니다.    
회원작성글 action919  |  2021.11.12
Q. PCR 전기영동 분석 첨부파일
전기영동 결과를 분석하는데 끌림과 선명도를 분석하는 프로그램이 있을까요?? 두 개의 프라이머 중에 선택을 해야하는데 분석하는 프로그램이 있는지 궁금합니다. 고수님들 도와주세요~
회원작성글 초코맛꿀  |  2021.11.11
Q. Tg 동물 읽는 법
Tg 동물의 유전자 조합을 읽을때  어떻게 이해해야 하는지 모르겠어요 Tg(mbpa:gal4 vp16;uas;gfp;uas:NTRmCherry) 일 경우  어떻게 이해해야 하나요? 여기서 : 와 ; 의 차이가 뭔가요?
회원작성글 동오  |  2021.11.10
Q. apotosis 분석[DAPI/annexin assay diagram] 자료해석 질문
[https://www.seoulin.co.kr/intro/bd-biosciences-%EC%84%B8%ED%8F%AC%EC%82%AC%EB%A9%B8apoptosis-%EB%B6%84%EC%84%9D/] 최근 CRISPR 관련 논문을 읽다가 apotosis 분석 관련 실험이 있어서 찾아보게 되었는데요, 아넥신V와 DAPI로 염색한 뒤  flow cytometry를 이용해서 세포들을 분류? 하는 방법을 보게 되었습니다. 그 설명들을 찾아보다가 한 기업에서 올린 자료를 보았는데요, 좌상단 2사분면 H1-1이라고 한 단계는 무엇인가요?   구글링을 해보려고해도 히스톤단백질에 관한 내용만 나오고 저런 워딩을 사용하는 자료가 없는거같아서 이해에 어려움이 생겼습니다 ㅠㅠ DNA가 외부로 유출되었지만, 세포막 내부가 밖으로 나오지 않은 상태의 cell들이라는 것인데 제가 화학공학을 전공하고 바이오로 전향한지 얼마 되지 않아서 기본기가 많이 부족하다보니 이런 기본적인 것들에서 계속해서 어려움이 생기네요 ㅠㅠ 혹시 도움을 주실 수 있으신가요?
회원작성글 SHY  |  2021.11.09
Q. 전기영동 속도 ds, ssDNA
같은 길이(bp)의 DNA라면 dsDNA가 분자량이 두배 더 높아서 조금 이동하는것은 당연한데 전기영동 속도 공식을 보면 v=Eq/f 이지않습니까? 이 공식에 따르면 분자량은 어디서 고려 되는것인가요?? f=6*파이*에타(점도)*r(비드반지름) 으로 나타나는데 식을 다 분해해봐도 질량의 영향을 찾을수가 없어서 궁금증이 생겼습니다. 식대로라면 전하량이 두배 큰 dsDNA의 이동거리가 더 커야하는것인데 이거는 직관적으로도, 실험적으로도 아닌게 확실해서요... + 추가적으로 사용하는 래더는 ssDNA인가요? 같은 질량이라면 전하량 또한 거리에 영향을 미치는 요인일 것 같은데 그러면 ds용과 ss용 래더가 달라야하는거 아닌가요?? 나름대로 찾아보고 공부해봤는데 제 생각과 지식의 한계에 갇혀서 다른 접근을 하지 못하겠습니다 도움 부탁드립니다 ㅠ
회원작성글 SHY  |  2021.11.08
Q. Ligation mixture 만드는 과정에서 질문사항이 있습니다.
 Ligation mixture를 만드는 과정에서 부피가 큰 용액부터 넣는 이유가 궁금합니다. 특히 부피가 같은 용액이더라고 왜 T4 Ligase는 제일 마지막으로 넣어주어야 하는지도 궁급합니다.
회원작성글 생화학22  |  2021.11.01
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