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[우당탕탕 석사 적응기] 석사 1학기 - 새로운 환경, 그리고 후회
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 카테고리: 전체 > Laboratory Animals > In Vivo Imaging
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Q. mouse 형광 관찰 관련
control군으로 mouse에 생리식염수 주입후 형광을 관찰하였는데 아래 사진처럼 붉은색으로 관찰된후 3일 뒤 다시 관찰하였더니 푸른색으로 변해있었습니다.  생리식염수를 주입하였는데 형광이 왜 나타난건지 혹시 알 수 있을까요?  
회원작성글 명혀 ㄴ  |  2021.02.04
Q. 10% 포르말린 (formalin) 마우스 조직을 고정 후 냉동되었다면 해동후 IHC 사용이 가능할까요
실험에 사용해야 할 조직을 포르말린에 고정 후 이후  별 생각없이 냉동처리가 되도록 만들었습니다 이쪽의 실수 이지만 이후 사용가능한 것이 무엇인지  알아야 할것 같아 질문을 올립니다   알아보니 H&E 같은 염색은 가능하다 하시는데 문제는 IHC 같은 면연염색도 가능할지... 다들 냉동과 해동을 거치면서 사용이 힘들수 있다고 하시는데 그 사용가능성이 조금이라도 있다면  퀄리티가 떨어지더라도 진행을 하고 싶습니다 고수님들이 보시기에 고정 후 조직을 냉동시켰다면 면역염색을 진행시키시나요 아니면 아예 포기 하시나요?   추가) H&E stainning만 진행한다고 했을때 해동과 냉동에 의한 피해없이 염색결과를 얻어 보신적 있으신지요...
회원작성글 행운13  |  2020.12.17
Q. 실험동물 mouse, rat 사후경직 시간에 따른 변화
안녕하세요. 실험동물쪽 일을 하고있는 일반 회사원입니다. 질문은 동물실험중 동물이 사망 했을경우 원인을 파악하기 위해 부검을 진행하는 경우가 많은데 사체의 부패로인한 조직의 변화인지 약물의 의한 조직변화인지 판단이 안서서 이렇게 질문드립니다. 실험동물인 설치류가 사망할경우 사후경직시작되는 시간과  경직융해 시간을 알고 싶습니다.  경직융해후 부패되는 시간 그리고 부패에 따라 liver, lung의 변화를 알 수있을까요?? 
회원작성글 밍고이  |  2020.10.22
Q. mouse body fat mass 측정 의뢰할수있는 곳 있을까요?
지금 사육 진행중인 mouse model이 있는데요, 희생하기 전에 body fat mass를 측정해보고싶은데 DXA나 CT 등으로 찍는거같더라구요.. 처음 계획한 실험이기도하고 랩에 장비도 없어서 몇마리만 의뢰를 맡겨서 찍어보고싶은데 혹시 국내에 의뢰맡길 수 있는 곳이 있을까요? 아시는 분 계시다면 추천부탁드리겠습니다 ㅜ
회원작성글 쩌업  |  2020.08.26
Q. 동물실험 대동맥 H&E 염색 후 현미경 검경
동물(rat) 부검하여 대동맥을 H&E 염색 후 슬라이드를 현미경을 통하여 사진까지 찍었습니다. 그리고 image J를 통해 대동맥 thickness 등을 측정하려고 합니다.  측정하기 위해서 set scale 해야하는데 기준이 되는 사진이 없습니다.  현미경 배율에 따라 scale bar 넣기 위해서 기준이 되는 사진은 혹시 어떤식으로 찍어야 할까요? 실제 알고 있는 길이를 찍어야 하니 자 같은 것을 이용해도 되는건가요?   
회원작성글 쫄이언니  |  2020.08.20
Q. 마우스 PET/MRI 촬영 기기 의뢰에 관하여 질문이 있습니다.
안녕하세요 이번에 처음으로 마우스에서 이미징을 하고자 하는데, 실험에 맞는 마우스 모델을 제작 후 brain에서의 glucose uptake를 시각적으로 확인하고 싶습니다. 따라서 소동물용 PET-MRI를 의뢰로 결과를 얻고싶은데 1. 서울권에서는 기기 사용가능한 곳은 몇군데 발견하였는데, 경남권 혹은 대전/대구권, 혹은 충청권 이남지역에서 이용가능한 기기가 있는지 (실험실이 경남권입니다.) 2. 사용시 조건(전날 마우스를 이동시켜 habituation 시켜야 하는지 혹은 필요한 시약 사전처리 등) 3. 촬영 후 마우스의 상태 (생사 유무, 혹은 다른 실험, 단백질 정량 에 사용하여도 되는지.) 가 궁금합니다. 경험있으신 선배님들의 소중한 답변 부탁드립니다. 감사합니다.
회원작성글 배꼽도둑  |  2019.09.09
Q. 랫드 근육 H&E 염색 과정 슬라이드 제작 첨부파일
안녕하세요. 아직 배움이 많이 필요한 대학원생 입니다. 이번에 랫드의 근육을 H&E 염색을 진행하여 근다발 세포의 면적을 측정할려고 합니다. 염색 후 현미경으로 촬영을 진행하는데 근세포가 너무 많이 갈라지는 현상이 일어나고 있습니다.  조직을 파라핀 블럭으로 만들어서 기계에 고정 시킨 후 블레이드를 기계에 장착하여 핸들을 돌리면 고정된 블럭이 위 아래로 이동하며 앞으로 나오면서 슬라이드를 제작하고 있습니다 혹시 이러한 갈라지는 현상을 조금이라도 줄일 수 있는 방법이 있을까요? 그리고 혹시 블럭을 상온에 두었다가 진행하였는데 더 차갑게하면 잘된다는 말이 있던데....맞나요?ㅜㅜ 혹시 깔금한 조직 슬라이드 만드는 팁이나 주의사항이 있다면 한번말 알려주세요.
회원작성글 butterfly5..  |  2019.08.14
Q. 동물실험 시 투여물질 녹이는 oil 차이
bixin이 포함된 아나토분말을 랫드에게 경구투여시 canola oil에 녹여서 투여하는데 왜 canola oil에 녹여서 투여하나요? mineral oil 이나 corn oil 과는 다른건가요?
회원작성글 배고픔  |  2019.06.01
Q. 동물실험 시 투여물질 녹이는 oil
동물실험 할 때 경구투여 물질을 mineral oil로 녹이는 이유가 궁금합니다.
회원작성글 배고픈연቎..  |  2019.05.31
Q. 개구리 위조직 첨부파일
개구리 위조직 프레파라트 제작해서 현미경 관찰했는데 사진에서 표시한 부분이 오른쪽이랑 비교했을 때 어느 부분인 건가요?
회원작성글 Noey  |  2018.12.03
Q. 지방 H&E 염색인데요ㅠ.. 이것을 data로 정리할수 있을까요?(사진참조)
고수님들..ㅠㅠ 도와주세요ㅠ..위의 지방 H&E염색 사진은 지방조직을 적출 한 후 냉동실에 보관 후 10% 포르말린에 담궈 의뢰를 하여 얻은 결과물입니다.그런데 논문과는 다르게.. 지방세포에 표면이 매끄럽지 않고.. 울퉁불퉁 하게 결과를 얻게 되었습니다.위의 사진은 data정리(논문)하는데 사용을 해도 될까요? 도와주세요ㅠ..
회원작성글 뭉뭉ㅋㅋ  |  2018.11.21
Q. 고수님 ㅠ 도와주세요ㅠH&E염색사진 (간) 첨부파일
안녕하세요ㅠ이번에 H&E염색을 처음 접하게된ㅠ 초년생입니다ㅠ 저희실험실에서는 측정할수없어ㅠH&E염색을 의뢰해서 간과지방의 사진을얻었는데요ㅡㅠ 논문에서 사진을 참고할때 간같은경우는 중심정맥? 거기를 기준으로 잘라서 사용하는것 같은데요ㅠ 어디가 중심정맥인지 잘모르겠어요ㅠ 간의 제일큰엽의 도톰한부위를 잘라서 H&E염색의뢰했습니다ㅠ (의뢰업체에게 어디를 잘라야하냐고 문의해보니 거길잘라서 보내라고해서요ㅠ) 아니면 제가 잘못 의뢰한건가요?ㅠ 아니면 간의 이하얀부위는 모라고 설명해야할까요?ㅠ 도와주세요ㅠ
회원작성글 뭉뭉ㅋㅋ  |  2018.11.01
Q. 마우스 종양 및 장기(간, 신장, 비장) 포르말린 고정 기간
안녕하세요 이제 막 대학원에 들어와서 이거저것 배우고 있는 신입생입니다.이번에 누드마우스에서 종양을 생성하여, 3주간 종양 억제 물질을 투여 후 희생시켜 각 개체의 종양과 장기 (간, 신장, 비장)을 얻었습니다. 그 다음 각 종양과 장기의 1/3을 절단하여 다른 실험을 위해 따로 보관 하였고, 남은 종양과 조직은 IHC, TUNEL, H&E 염색을 위해여 10% 중성 포르말린에 고정시켰습니다. 기존에는 보통 장기를 절단하지 않고 그대로 1주일동안 10% 포르말린에 고정 시킨 뒤 꺼내서 카세트에 들어갈 정도로 자른 다음 다시 카세트에 넣고 10% 포르말린에 1주일 더 고정시켜서 총 2주 동안 고정시켰습니다.이번에 IHC, TUNEL, H&E 염색을 진행해야하는데 혹시 과고정되서 파라핀 블럭이 다 갈려서 나오거나 염색이 안될까바 걱정입니다... 혹시 마우스 장기나 종양 고정기간에 관하여 자세히 알고 있으신 분은 알려주시길 부탁 드립니다~ 그리고 파라핀 블럭 이용하여 슬라이드만들어서 IHC, TUNEL, H&E 염색에 좋은 정보 있으면 알려주세요!
회원작성글 butterfly5..  |  2018.07.02
Q. TH Neuron이나 조직의 특정 세포를 Sterology 하는 정확한 방법이 있을까요
 저희 실험실에서는6-OHDA를 처리하거나, 바이러스등을 처리해서TH neuron의 수를 세고 있습니다.Cryocut으로 35uM로 24well dish에다, 한마리당 6well씩, 티슈를 한조각 한조각 담근 다음에,1well만 건져내서 DAB staining을 해서 Stereology로 셉니다.1well에서 건져내는 Substantia nigra의 수는 6~7장 정도입니다만,조직을 건져내면서, wash하고 염색하는 동안 찢겨나가서실질적으로는 3장에서 6장까지 건져냅니다.근데 논문들 읽어보면 어떻게 카운팅했다라고 구체적으로 설명은 안되있고자기들도 머 6well마다 담궈서 했다던가 혹은 뭐 몇장을 건져서 랜덤하게 몇장만 골라서 셌다.던가 이런 식인데,웃긴건 도파민 뉴런의 수는 마우스 한마리당 논문만 보자면최소 6천개 이상은 되보입니다. 35장의 Substantia nigra의 수를 다 세는 것은시간상 무리수고, 섹션마다 겹치는 뉴런들도 존재할 것으로 생각되기 때문에 6장을 다 센다음, 6이나 10을 곱하는 식인것 같은데요.구체적인 방법을 알 수 있을까요?
회원작성글 토라  |  2017.11.09
Q. 랫드에서 미네랄 측정하고자 하는데..
 안녕하세요. 이번에 랫드에서 미네랄을 측정하고자 하느데..뇨와 배변에서 측정을 하는 방법을 선택했습니다.그런데. 관련논문들을 찾아보니. 일주일중 매일 투여하고 희생하기 3일전에 대사케이지로 옴겨서 변와 뇨를 채취하는것이 나왔습니다.저는 실험 스케줄을 일주일중 월요일에 sample을 주면 그로부터 3일동안 대사케이지를 통해서 미네랄의 변화를 측정할려고 하느데.. 이러한 방식은 틀린건가요? 스케줄을 어떻게 잡아야 할지...만약 앞서 이야기한 방법으로 한다면, 왜 희생하기 3일전인거죠??월요일날 먹은게 화요일에 나올수도 있는것인데..궁금합니다.
회원작성글 라임즌  |  2017.08.23
Q. IHC 와 IF
IHC 와 IF 에서 IF를 선호하는 특별한 이유가 있나요? 장점은 IHC가 더 많은거 같은데..
IHC  |  2017.02.20
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