[DEBUG-WINDOW 처리영역 보기]
즐겨찾기  |  뉴스레터  |  오늘의 정보 회원가입   로그인
BRIC홈 실험
ACROBIOSYSTEMS
배너광고안내
이전
다음
스폰서배너광고 안내  배너1 배너2 배너3 배너4
BioLab 장재봉 교수
전체보기 안전점검 LABox
 카테고리: 전체 > Molecular Biology-DNA
Mol. Biol.-DNA Mol. Biol.-RNA Mol. Biol.-Protein Immunology
Cell Biology Microbiology Plant Biology Laboratory Animals
Omics Chemical biology Bioinformatics Laboratory Equipments
Buffer/Reagent Bioethics Etc.
카테고리 전체보기펼치기
질문/투표/프로토콜 등록
Q. cas9 primer관련 질문
Cas9 promoter가 어떤게 쓰이는지, gRNA gfp를 넣어주는 이유를 알수있을까요? 또한 primer를 제작할때 homologous arm을 넣어주는 이유도 알수있을까요?
회원작성글 학헉학도생  |  2022.10.09
Q. SYBR Green melt curve가 이렇게 뜨면 어떻게 해야 하나요?
주황색으로 뜬 peak가 원래 정상적인 peak인데요 저 보라색처럼 two peak로 뜨면 어떻게 해석을 해야하나요? ct값은 주황색 22, 보라색 29 이렇게 떴습니다. 보라색의 경우 n/a로 봐야 하나요? 저 보라색 샘플만 저렇게 뜹니다..ㅠㅠ  two peak로 뜨면 어떤 경우인건가요?? 답변 부탁드려요ㅠㅠ 도와주세요
회원작성글 soor  |  2022.10.09
Q. Real time PCR 키트 구성에 관해서...
아직 학부 공부 중인 대학생입니다. 다름이 아니라 팀플을 하다가 궁금한 것이 생겨서 질문을 올리게 되었습니다.혹시 real time PCR 키트 중에 구성된 CTM Mn2+는 왜 사용하는 건가요? 계속 찾아보고 책도 보고 했는데도 잘 모르겠습니다ㅠ 제가 real time PCR에 관해서 잘 몰라서 그런 걸 수도 있으니 양해 부탁드립니다!
회원작성글 물음표살인마  |  2022.10.09
Q. gene background 조사 하는 법
안녕하세요.. 이제 막 한달이 넘은 초보 석사입니다....   교수님께서 gene list를 주시고 background를 조사해서 발표하라고 하셨는데, 어떤 것들을 조사해야 하는지 잘 모르겠습니다.   일단은 gene name, function, expression, pathway를 정리했는데, 어떤 것들을 더 조사해서 정리하면 좋을까요??   도움주시면 감사하겠습니다
회원작성글 jamjam_ll  |  2022.10.08
Q. restriction enzyme처리 후 DNA 전기영동 관련해서..
안녕하세요 학부생인데 실험하면서 결과 추론이 안되는 부분이 몇 가지 있어서 질문 드립니다.   1. 각각 형태가 다른 plasmid DNA를 전기영동하면 supercoiled form > linear form > nick (or circular ) form 순으로 band가 찍히는 걸로 알고 있습니다 만약 plasmid DNA의 크기가 1kbp라고 가정한다면, 전기영동을 하였을 때 linear DNA는 1kbp부근에서 band가 찍히고, nicked DNA는 1kbp보다 좀 더 큰 위치에서 band가 찍히는 것인가요?   2. insert DNA를 만드려고 DNA에 restriction enzyme처리 후 prep과정 거치고 전기영동을 해봤는데요 이상하게 몇몇 밴드는 다른 밴드보다 두껍게 나오네요  nanodrop 측정했을 때는 농도도 거의 비슷하고 모두 같은 양을 loading하였는데 무슨 문제일까요??.. 전기영동 전에 실험하면서 오염된 유기용매에 의해 band 모양이 달라질 수 있나요?
회원작성글 형준팍  |  2022.10.08
Q. Dna 량 구하는 실험 질문이요.
Dna의 1.0 kb의 intensity 500,000 이렇게 나온건 무슨 뜻인가요?
회원작성글 Fhwi38  |  2022.10.08
Q. Real-time PCR에서 Reverse primer와 probe 시퀀스가 같으면?
안녕하세요. 근래에 real-time PCR에 대해 공부를 하고 있는데, 어느 논문에서 reverse primer와 probe의 시퀀스가 같도록 디자인을 했더라구요.   제 생각에는 primer와 probe가 경쟁적으로 붙어서 PCR 효율도 떨어지고, 형광 수치도 낮아질 것 같은데, 이렇게 시퀀스를 같게 사용하는 경우도 있는건가요?? 전문가분들의 의견을 듣고 싶어서 질문올립니다!  
회원작성글 dyleeh  |  2022.10.07
Q. pcr point mutation에 대해 궁금합니다.
안녕하세요 enzyme point mutation을 갓 시작한 대학원생입니다. 키트를 사용하여 실험 진행을 하는데 kit user guide에서 pcr을 두 번 진행하더라구요. 혹시 왜 두 번 진행하는지 아시는 분 계신가요? 제가 못 찾는건지 아무리 찾아봐도 관련 글을 못찾겠어서요... 아시는 분들은 도와주세요
회원작성글 앙칼진 아기고양이  |  2022.10.07
Q. enzyme cutting과 관련하여 문의드립니다.
안녕하세요. enzyme cutting 과정 중 궁금한 내용이 있어 질문드립니다. miniprep을 진행하여 얻어낸 DNA를 microplate reader를 사용하여 측정하였습니다. 1. microplate reader를 사용하여 측정하였을 경우 단위가 어떻게 되나요? 2. 740정도의 결과값이 나온 것을 2ul를 분주하려고 하는데 2ul를 넣었을 때 1kbp이상의 값이 된다고 하는데 왜 그렇게 되는지도 궁금합니다. (1ul 측정)  
회원작성글 HuiJ  |  2022.10.06
Q. 같은 길이의 DNA인데 전기영동된 거리가 다른 이유는 뭘까요? 첨부파일
모두 DNA길이 자체는 같은데 세번째 레인만 전기영동된 거리가 다르게 나왔어요 시료의 재료별 농도가 다르긴 했으나 DNA는 길이가 같았는데 왜 이렇게 길이가 다른 것처럼 나왔을까요?
회원작성글 별이총총  |  2022.10.06
Q. 2개의 PCR product를 ligation시키는 과정에서 enzyme site가 이상합니다.
안녕하세요 cloning 실험을 진행중인 학생입니다. 현재 2개의 insert를 PCR을 통해 합성하여 ligation 시킨 후 vector에 넣어주기 위해 실험을 진행하고있습니다. 1번 PCR product  (SacI) GAGCTC-----------         -----------CGATCG (NheI)   2번 PCR product (NheI) GCTAGC------------          -----------CCCGGG (ApaI)   pirmer는 enzyme cutting이 잘 되도록 앞쪽에 AAA를 추가하여 제작하였고 PCR 후 enzyme cutting을 진행했습니다. (1H, 37 'C) 각각 enzyme cutting된 product는 gel에 loading하여 kit를 통해 extration하였고 takara ligation mix로 ligation을 진행했습니다. (1 H, 16 'C) 만들어진 ligation mix와 1번의 F primer, 2번의 R primer를 이용하여 PCR product를 제작하였고 size를 통해 ligation이 잘 되었는지 확인하였습니다.  이후 1번과 2번이 ligation된 PCR product를 enzyme cutting, gel extration하여 준비했습니다. 준비한 insert는 SacI과 ApaI으로 cutting된 vector에 1:3, 1:5 비율로 ligation 시켰습니다. transformation 후 colony PCR로 insert를 확인하고 mini prep하여 5개의 샘플을 sequencing 하였습니다.   sequencing 결과를 확인해 보니 GCTAGC로 있어야 할 NheI 부분이 5개 모두 GCTAGCTAGC  CGATCGATCG 형태로 나오고 있습니다.   원인을 찾아보려고 노력하는 중인데 해결이 쉽지 않아 질문 드립니다. 이러한 문제가 생기는 원인이 뭘까요?  어떤 자료들을 찾아봐야 원인을 알수있을지 너무 막막한 상태입니다. 도움이 될만한 키워드라도 생각이 나신다면 알려주시면 감사하겠습니다.    
회원작성글 무농약감자  |  2022.10.05
Q. integration 과 plasmid 차이
하나의 생성물을 발견하기 위해서 integration을 균주에 시키는것과 plasmid를 transformation시키는것 의 차이가 어떤건지 알수있을까요?
회원작성글 학헉학도생  |  2022.10.04
Q. g DNA의 rna 오염 확인 방법
초보 대학원생입니다. whole genome sequencing을 하려고 식물로부터 dna를 추출하였습니다. 업체에 qc를 맡겼는데, rna 오염되었다는 보고서를 받았습니다. 전기영동 결과로 rna 오염을 확인할수 있나요? 어떻게 rna 오염을 확인하나요? rnase a 처리를 했는데 rna가 오염되었다고 해서 원인을 분석하고 있습니다ㅠㅠ  
회원작성글 오르골  |  2022.10.04
Q. lentiviral vector plasmid prep 할 때 주의할 점 문의
Plasmid를 midi prep (preparation)을 하게 되면 일반 vector의 경우 400-600 ug/mL 농도가 나와서  Cell Transfection 할 때에 잘 사용하고 있어요.    그런데 사이즈가 큰 lentiviral vector (0.8~12kb)가 들어간 E.coli에서 plasmid를 prep 할 때에,  Elution 용액을 70도로 데워서 elution을 해도 30~100 ug/mL 농도가 나와요. 가~~~~끔 농도가 높게 나오기도 하는데, 이게 case by case 같이 유독  그 vector가 농도가 들쭉날쭉해서,    혹시 lentiviral vector plasmid prep 할 떄에 주의사항이나,  방법적으로 알고 있어야 하는 것이 있는지 궁금합니다.   
회원작성글 clickclick  |  2022.10.04
Q. cell lysate에서 DNA만 깨는 방법
cancer cell lysate vaccine 연구를 하는 중인데 동물 실험의 결과가 잘 나와서  임상연구를 진행하고자 합니다. 그런데 저희 방법 상  저희의 cell lysate 안에는 DNA가 포함이 되어 있어서 다른 단백질들에는 영향을 주지 않고 DNA만 깨는 방법을 고민중에 있습니다. 현재는 sonicator or DNAse 등을 고려중인데 sonicator는 저희가 원하는 condition을잡아야한다는 난제가 있고 DNAse 처리는 DNA 처리 후에 DNAse를 inactivation 시키는 과정에서 다른 단백질들도 영향을 받을 것이 염려되고 있습니다. 저희의목적에 맞는 좋은 방법 있으면 공유 부탁드립니다.   감사합니다.  
회원작성글 새슬  |  2022.10.04
Q. qPCR 할 때 주형에 대한 질문입니다! (gdna, cdna 관련)
qPCR 할 때 gDNA를 주형으로, cDNA를 주형으로 하는 경우가 따로 있는 것 같습니다. 제가 인턴할 때 수행했던 방식은 어떤 것인지 궁금한데요,, 당시 gDNA 서열을 받아 그에 대한 primer를 제작하고, cell line을 받아서 qPCR 했었습니다. 1. 원래 primer 자체는 gDNA에 대해 만드는게 맞나요? 2. 제가 받은 cell line은 cdna인지 gdna인지 알 수 있나요?? gdna로 primer를 짠 것이라 무조건 gdna인건지 아닌지 잘 모르겠습니다.. 너무 바보같은 질문인것 같지만....ㅜㅜ 감사합니다
회원작성글 이이  |  2022.10.04
이전  11 12 13 14 15 16 17 18 19 20  다음
실험 회원 등급이란?
실험Q&A 회원등급안내
위로가기
실험 홈  |  실험FAQ
 |  BRIC소개  |  이용안내  |  이용약관  |  개인정보처리방침  |  이메일무단수집거부
Copyright © BRIC. All rights reserved.  |  문의
트위터 트위터    페이스북 페이스북   유튜브 유튜브    RSS서비스 RSS
필코리아테크놀로지 광고