안녕하세요 궁금한 사항이 있어 질문 남깁니다. 이번에 NO production을 찍는데 protein 별 정확한 NO production을 확인하기 위해 24 well에 seeding을 진행한 뒤 상등액으로 NO를 찍고 아래 남아있는 cell의 protein 수득을 통해 protein 별 발생한 NO 값을 측정하고자 합니다. 우선 protien lysis는 100ul로 진행하였고, 정량을 통해 y=A+Bx의 값을 얻었습니다. standard인 BSA의 단위가 mg/ml여서 얻은 x의 값에 100ul를 곱해 100ul의 용액 속 protein이 x*100의 양이 들어있다고 계산을 하였고, 이에 따른NO production을 비례식을 세워 구하려 하는데 측정된 NO 값에서 비례식을 어떤식으로 세워야 하는지 감이 잡히지 않습니다ㅜㅜ 얻은 상등액은 800ul인데 이것을 이용해서 비례식을 세워야 하는 걸까요..? 아시는 선생님 계시면 설명 부탁드리겠습니다..ㅜㅜ

안녕하세요! 실험수업으로 prep을 해서 결과를 봤는데, 제가 책에서 배운 내용으로만 결과를 해석하기 어려워서 여쭤봐요. pT7-7은 2473bp로 나오는데 결과에서는 길이가 다르게 나오는게 초나선형 구조때문에 더 짧게 나오는 걸까요? 또 밴드가 왜 두개로 나오는지는 모르겠어요.   나노드랍을 해보면 pBGS18은 prep을 다시 해서 해도 이정도로 낮게 나오는데 pT7-7은 매우 잘 나오는걸 보면 균이 아픈걸까요?...  pBGS18 Conc : 37.09                                    260/230 : 1.70 260/280 : 1.49 pT7-7 Conc : 565.37 260/230 : 2.02 260/280 : 1.83  

안녕하세요 hplc로 논문준비하고있는 학부생입니다 다름이아니라 단일용매 water로 blank(methanol)을 찍었을 때 그래프에 의문이 생겨 문의합니다. 원래 gradient로 실험을 진행하다가 gradient로 인한 noise나 drift를 파악하기위해 blank부터 각각의 용매로 그래프를 확인해보는 차에 water 등용매 5-10 min 차에 급격하게 그래프가 저런식을 발생되는 일이 두 차례 발생하였습니다. 저렇게 되는 원인이 무엇인지 모르겠어요,, C18 유속 0.8ml 40min이고 워싱은 acn 80min water 30min methanol 30min (0.8유속) 하였습니다.

먹던 초코 아이스크림을 시료로 해서 pda배지에 배양한 곰팡인데 무슨 곰팡이인가요??

목표식물에서 타겟물질 생성 Pathway에 있는 유전자들의 서열과 qPCR을 이용해서 발현량을 보고 싶은데    - 현재 pathway는 reference를 찾았습니다.  - 전장유전체 분석이 ncbi 등에 있지 않은데,   타겟물질이 생성되고 pathway가 유사한 다른식물의 공동된 유전자의 primer를 가져와서 적용해보는건 괜찮은 시도인가요??    - 해당 유전자의 유사도 E-value 등을 측정할 때 같은 primer를 사용해서 하는게 보통인지 궁금하네요   다 인터넷 찾고 논문 읽으면서 공부해서 다른 사람한테 직접 배운게 없어서 모르는게 많습니다 ㅠㅠ

L-ascorbic acid와 ascorbic acid는 같은 물질인가요..??   찾아봐도 이런 질문을 한 사람이 없고 각각 검색해도 섞여서 결과가 나오고 해서 궁금하네욤..

CAD-HPLC 를 사용하여 시료를 분석하고 있습니다. 분석시간: 40min 이동상 조성: Methanol, Chloroform, ammonium acetate, acetic acid, water Column: waters C8 현재 이동상을 Blank로 사용하고있는데 Blank 를 injection 하기만 하면 9~19분대에서 약 1분 간격으로 작은 peak들이 용출됩니다. 문제는 이 작은 peak들이 나올때도 있고 안나올때도 있다는겁니다. 처음엔 Detector의 오염이라고 판단했으나 새로 들어온 장비를 사용해도 같은 현상이 발생했고, 아예 새 Column을 뜯어 사용해도 같은 현상이 발생했습니다. 의심되는건 이동상뿐인데 Methanol, Chloroform, acetic acid 모두 J.T.baker 제품을 사용하고 모두 LC grade입니다. ammonium acetate도 LC grade를 사용합니다. 시약의 문제인가 싶어서 새로운 시약으로 바꿔도 같은 현상이 나타납니다. 물이 원인일까 싶기도 했는데 같은 물을 사용해도 peak가 아예 안나타날때도 있어서 원인을 특정하기가 어렵습니다. 혹시 이런 문제를 겪어보신 분들이 계실까요?ㅠ 답변 부탁드립니다….ㅠ

Cell에서 RNA 추출 후 cDNA합성하여 template로 사용하려고 합니다. Housekeeping gene으로 GAPDH를 사용하고 샘플들 간의 gene A(예시) 발현량 차이를 Real time PCR로 비교하려고 합니다. 먼저 GAPDH와 gene A의 STD curve를 그려서 R^2=0.99 이상에서  Eff%가 90~110% 안으로 들어오는지 확인합니다. 그리고 Melt Curve에서 sharp하게 하나의 peak만 뜨면 일단 primer에는 문제가 없다고 보고,  샘플들 간의 gene A 발현량 비교를 위한 본 실험에 들어가려고 합니다. 교수님께서는 굳이 STD curve 그리지 말고 그냥 바로 본 실험 하라고 하시는데, primer 디자인이나 STD의 dilution factor 등 다른 요인은 빼고 위 과정 자체만 봤을 때 이상하거나 부족한 부분이 있을까요?

안녕하세요 전에 검사들 토대로 culture 배양시켜서 눈에 익히려구 공부를 하고있는데 urine 검체로 배양시켜본 검체가 양성인지 여쭙고 싶습니다 다른 양성 검체들과는 세포가 배양된 모양이나 양상이 다르게 나와서 너무 헷갈리네요ㅠㅠ 다른 검체들은 셀 크기도 확실히 더 크고 모양도 돼지코 모양으로 딱 이쁘게 나오는데 혹시 왜 다른 검체와 양상이 다른지도 아시는분이 계시다면 가르쳐 주셨으면 합니다 저배율로 보다가 찌꺼기인지 구분이 어려워 고배율로 최대 확대했는데 양성인걸까요?

Zebrafish( Danio rerio)에 있어서 돌연변이 유도 화학물질이라고 생각되는 물질 "X"를 zebrafish에 처리해서 돌연변이를 유도시킬 계획입니다. 실험계획을 짜고있는데 돌연변이 실험 관련해서 조언을 구할 수 있는 곳이 없어 부득이하게 BRIC 고수분들께 질문올립니다.   실험계획 1. gDNA extraction by finclip (물질 "X" 처리 전) =a   2. 물질 "X" 처리, (Control group은 미처리)   3. gDNA extraction by finclip (물질 "X" 처리 후) =b   4. a, b + 선별된 target gene 1,2,3,4,5 primer + SYBR Green mix  realtimePCR->melting curve 확인   5. a, b 에서 같은 target gene의 melting curve가 달라졌다면 돌연변이 유도가 일어났다고 판단 (Control group이 달라졌을 경우 troubleshooting 후 재실험)   과정중에 어떤 부분이 미흡한지 지적 부탁드립니다. 추가적으로 더 나은 실험법이 있다면 공유부탁드립니다!

배양하고 담날 아침 녹색으로 알파 용혈이 생겼는데 일주일쯤 지나니까 투명하게 변해서 베타 용혈인가 싶기도 하고 어떤 세균인지는 모릅니다  이거는 알파용혈균으로 봐야하나요?

2~6℃ 또는 -20℃ 이하에서 보관하는 시약(CELLBANKER1)과 0~4℃에서 보관하는 시약(EZ-cytox) 1~2시간 운반 시 아이스팩 몇 개 채운 아이스박스에 넣어 운반해도 괜찮을까요?

안녕하세요.   Real-time PCR multiplex 실험을 계획할 때 생각해야할 것들에 대해 고수님들의 조언을 부탁 드립니다.   일단 primer / probe 디자인해서 multialign으로 검증해보기 (특이성 확인, primer 2차구조 형성 여부, dimer 생성 여부 등) 그 다음에 실제로 primer, probe를 주문해서 잘 working하는지 테스트를 해보는 단계에서는 어떤 점을 생각해야 할까요?   단일 primer가 잘 되는지는 일반 PCR과 전기영동으로 size 확인해볼 수 있을 것 같은데.. Multiplex 해서는 probe 테스트 전에 SYBR 방식으로 테스트 해볼 필요가 있을까요??   이쪽은 처음이라 무지해서 고수분들의 조언을 듣고싶습니다..!! 부탁드려요 ㅜㅜ

  도와주세요 ㅠ    제가 타켓으로 하는 단백질의 siRNA를 회사별로 구매해서 사용했으나,  전혀 단백질 감소가 나타나지 않았습니다.  (siRNA 초보는 아닙니다;;)   그래서 결국 crisPR-cas9 을 이용해서 특정단백질 다운을 시도했습니다  (cas9은 처음입니다만..) 벡터형태라 puromycin으로 cell selection 했구요  처음엔 단백질이 다운되길래 신나했는데  그 이후 다시 회복이 됩니다 ㅠ 계속 puromycin은 처리 하면서 키웠는데도요 ㅠㅠ   이래보신적 있나요?  PCR 로는 확실히 다운이 되는데.....  단백질은 ㅠㅠㅠㅠㅠㅠ 왜 다시 올라온걸까요? ㅠㅠㅠㅠ   결국 교수님이  웨스턴의 문제 아니냐 , 제 손 탓을 하시기 시작해서 ㅠㅠㅠ (제 손이 문제였다면 다른 단백질확인도 잘 안되야 하는데  다른 단백질은 일절 문제가 없거든요 ㅠ)   제가 뭘 놓치고 있는걸까요  cas9 시스템으로는 넉다운된 stable cell line을 구축할 수 없는건가요?   

cell stock이랑 EZ-cytox 들고 1~2시간 거리에 있는 곳으로 이동할 예정입니다. cell stock은 보온병에 LN2 담아서 넣어 들고가면 되는데 EZ-cytox는 0~4℃ 보관으로 알고 있습니다. EZ-cytox도 LN2 들어있는 보온병에 같이 넣어가도 될까요?? 아니면 그냥 아이스박스에 얼음팩 몇 개 채워서 가도 문제 없을까요??

안녕하세요 마이크로 플레이트 리더기를 이용한 피브린용해효소 활성 분석법을 이용하여 실험을 하려고합니다.   필요 시약중 0.7% 피브린 용액이 있는데 보통 피브린용액은 트롬빈+피브리노겐을 반응시켜 만드는것으로 알고 있습니다. 그러면 0.7%로 반응시키려면 어떻게해야하죠..?