안녕하세요. 해양생물을 공부하고 있는 대학원생입니다.    이번에 바지락를 스트레스 상황에 노출시키고 대조군과 비교하는 실험을 하면서, 대사 물질을 분석하는 방법을 시도해보았습니다.    대상 물질은 Lactic, maltic, fumaric, succinic acid로, 실험실 내에서: 실험 종류 후 급속냉동->  동결건조 -> 파우더 처리 -> 분석원 의뢰를 거쳐 분석을 하였습니다. 그런데 결과서를 받아보니 오직 fumaric만이 검출되고 나머지는 검출되지 않았습니다. 타 논문을 바탕으로 HPLC에서도 나머지 물질들이 충분히 검출 가능한 것(즉, 검출이 가능하며 바지락 내에 모두 충분히 존재함)으로 나타났는데, 현재 해당 문제가 2번째 발생하였고, 분석원 측에서도 원인을 알 수 없다 하여 전처리 상에 문제가 있는 것인지 의심되는 상황입니다.    1. 위의 전처리 과정에서 fumaric acid 외 다른 물질이 손실될 만한 원인이 되는 상황이 혹시 있을까요?  2. 혹시 전처리 상의 문제가 없다면 HPLC보다 더 정밀한 수준의 분석법이 있을까요? (GC-MS를 사용하는 논문도 많이 있긴합니다)    질문 내용이 모호한데 답변주시면 큰 도움이 될 것 같습니다.    읽어주셔서 감사합니다.

살리실산메틸과 염화제이철이 만나면 적자색을 띄는 이유가 무엇인가요?

나노입자 같은 경우에는 콜로이드 분산을 시킨 상태로 쥐 in vivo를 확인하려면 정맥투여를 한다고 생각을 하고 있는데, 주사용제로 사용되는 용액이 밑에 있는 주사용제들로 사용이 되는건가요?   생리식염수 또는 인산염 완충 식염수(PBS) 및 글루코스, 폴리에틸렌글리콜, 및 폴리프로필렌 글리콜 및 이들의 혼합물과 같은 용해보조제를 함유하는 용액을 포함하나, 이들에 한정되는 것은 아니다.

안녕하세요  A라는 자생식물 100g을 100% 에탄올로 추출 및 농축하여 (동결건조는 안하고 용매 모두 휘발) 약 3g의 고형분 (dry weight)을 얻었습니다. 여기에 분석을 위해 100% 에탄올로 다시 녹여서 3g/15mL 즉, 200mg/mL 농도의 추출물을 얻었습니다. (200000 ppm 이라고 가정) 이 추출물 샘플을 에탄올에 2000배 희석하여 100ppm으로 만들어 분석에 사용하였습니다.   ellagic acid를 스탠다드로 검량선을 그렸고 추출물 100ppm을 찍고 그 area 값을 검량선에 대입하여 0.7ppm이라는 결과를 얻었습니다. (injection volume은 동일하게 함)  그럼 이 때, 추출물 100ppm 안에 ellagic acid가 0.7ppm이 들어있는 것이 맞나요?... volume이 동일하니까?.. ㅠㅡㅠ 일반적인 계산법과 달라서 헷갈립니다... 

안녕하세요. Avanti polar lipid 16:0 LyPA (857123P) 제품으로 연구를 진행하려고 합니다. 그런데 따로 홈페이지에 data sheet가 없어서 다른 논문 참조하니 methanol을 용매로 사용하였고 저희 실험실에서 비교하기 위하여 쓰는 물질의 용매도 methanol:chloroform=1:1을 사용하여서 동일하게 사용하니 제대로 용해가 되지 않아 용매를 바꿔야할 것 같습니다.. 추가로 찾아보니 동일한 제품과 구조의 용해법은 나와있지 않고 다른 제품이지만 화학구조적으로는 saturated, unsaturated 차이만 있는 제품의 용해법들은 몇 가지가 존재합니다. 그런데 저희가 지금 시약 자체가 소량만 마음대로 test를 해볼 수가 없는 상황이어서 혹시 lipid saturated form, unsaturated form간의 용해도 차이가 많이 존재할까요?ㅠ 우선 방법(1) chloroform:methanol:acetic acid=95:5:5 mixing sol 내 dissolve 방법(2) 0.1% fatty acid free BSA/PBS -> filtering -> dissolve 입니다. 혹시나 동일한 제품으로 연구를 해보신 적이 있는 선생님이 계시다면 첨언 부탁드립니다ㅠㅠㅠ.. 감사합니다

원래 실험과정에서 아세톤을 사용해서 분리하는 건데 큐벳이 녹아버려서 그냥 시금치를 원심분리해서 흡광도를 측정했습니다. 근데 이론상으로는 엽록소 색소 각각 측정했을때 540부터 왔다갔다 거리는데 제가 측정한 그래프에선 파장이 190부터 왔다갔다 거립니다. 혹시 파장별 흡광도가 농도에 따라 달라지나요?

안녕하세요 : )  GC 유저로 궁금한게 있어서 여쭤보려 합니다. 제목과 마찬가지로 GC 소프트웨어 프로그램으로 Method를 보내주어 장비를 셋팅했을시, FID 에서 Signal값이 약 0.4xx를 띄며  점점 줄어드는 현상이 보였는데요. (평상시 0.009~0.015) 이러한 상태에서 분석을 했을 시 크로마토그램의 양상이 궁금합니다. 또한 Signal 값이 주는 실험적 요인이  궁금합니다. 답변 기다리고 있겠습니다.

화학적인 기초가 많이 부족해서 질문 드립니다. 시료를 만드는 과정에서 황산을 용매로 사용하게 되어, 시료에 그 잔류량이 얼마나 있는지 안전한지 확인하기 위해 분석시험을 의뢰하였습니다. 황산대신 SO4 2-를 측정하는 이유가 뭔지요? 6M 황산을 용매로 이용하였는데, 전부 수소와 SO4 2-로 분해되는 것이 맞는지요? SO4 2- 자체는 그렇게 독성이 있지 않은 것으로 알고 있는데, 수치가 많이 나와도 신체에 해롭지 않다고 이해하는 것이 맞나요?

95% H2SO4 용액으로 61.5% H2SO4 용액을 만드려고 합니다… 1L 기준으로 비율을 어떻게ㅡ해야 하나요?

 감잎추출물의 지표성분을 Tannic acid 로 잡아서 분석중에 있습니다. 시료는 에탄올에 녹여서 물:MeOH 로 50:50 흘려서 230, 270 nm 로 컬럼온도 25도에 C18 로 분석중에 있습니다.   같은 샘플을 서로 비슷한 농도로 2-3번 분석하는데 첫번째 바이알 농도가 4047.6 에 Area값이 154.563 이라면, 두번째 바이알은 농도가 4083.8 ppm 임에도 68.725로 값이 많이 차이가 납니다. 인젝션을 할수록 Area가 줄어드는 경향입니다. uv wavelength 를 확인했을때는 같은 피크라고 확인이 되는데 어찌해야할지 모르겠습니다. 스탠다드 area 334.204 인 (샘플비 1:1)를 넣어 스파이크 하면 125.805 가 나옵니다.   분석법이 잘못 된 것일까요? 논문에서는 밸리데이션이 된 방법이라고 하여 사용중입니다. 

안녕하세요 수산화칼륨을 결정으로 가지고 있는데요 이것을 가지고 0.1N 수산화칼륨 에탄올 용액을 만들고자 하는데 어떻게 만들어야하나요ㅠㅠ 도와주세요ㅜㅜ

제가 UV로 찍으려는 2가지 물질은 파장이 완전히 다르기에 서로의 피크값에 영향을 크게 주지는 않습니다 그렇지만 서로의 피크 범위에서 약간의 흡광도(0.05미만)가 존재하기 때문에 이를 보정해야 할 것 같은데요 단순히 a+b의 혼합물의 흡광도에서 같은 농도의 a의 흡광도를 빼주면 순수한 b의 흡광도가 나오는게 맞나요? 이해가 잘 안됩니다 ㅜ 도와주세요!    

역반응또는 크롬망간인가...? 했는데 서치해봐도 나오질 않네요 관련정보는 어디서 찾을 수 있을 까요 ㅜㅜ

현재 약물 A를 분석법 셋업 후 Rat PK 진행 중에 있습니다.   PO 부형제는 MC+0.05%Tw20(Sonication/vortexing)으로 진행 하고 있습니다.   예비 시험을 통하여 대략 지속적으로 Cmax 1000ng/mL이 나왔고, 본 시험 진행 하였습니다. 본 시험 결과 Cmax 1ng/mL 수준으로 확인이 되었습니다. 이후 반복 시험을 진행 하였지만 1ng/mL이상이 나오지 않고 있습니다.  동물 담당자도 지속적으로 반복 진행 하였으며, 혹시 몰라 다른분에게 진행 부탁을 하였으나 결과는 낮게 측정이 되고 있습니다. 분석 부분에서는 직선성을 지속적으로 확인 하였고, stock solution도 다시 만들었지만 분석상의 이슈는 없어 보입니다. 근데 IV는 잘 나옵니다. ㅠㅠ   정리: IV 투여 시 이슈 없음 PO 투여시 대략 1/1000으로 감도 저하 관련 소모품은 다시 조제 하였습니다.   관련 하여 혹시 문제가 될만한 내용이 있을까요?   답변을 주실분이 계시다면 감사하겠습니다. ㅠㅠ    

NaHSO3 용액과 KIO3 용액으로 시계반응 실험을 하려 하는데 혹시 이 반응에 정촉매나 부촉매가 있을까요??

안녕하세요. : ) 다름이 아니라 HPLC 분석 시험중에 UV Dectector 관련하여 질문 드립니다. 크로마토그래피 형태의 전기적 신호로 데이터를 수집할때 메소드 설정 후에 실시간 데이터를 받았을시 파장의 형태처럼 나오는것이 아니라(라디오 주파수 모양) 블록 형태로 계속 진행 되는 양상을 보이는것은 소프트웨어의 문제 일까요? 아니면 장비펌웨어 또는 UV 관련 문제일까요? UV 램프 잘 작동하는지 확인하였으며 Inlet , Outlet 모두 재확인 하였습니다. 조언 부탁 드립니다.

비타민C 체내 흡수와 관련된 심화 실험에 뭐가 있을까요? 고등학교 과학실 내에서 실험 가능한 것으로 추천 부탁드립니다. 참고로 과학실 내에 웬만한 기구는 거의 보유하고 있습니다! 그리고 너무 쉬운 실험보다는 심화적인 실험이었으면 좋겠습니다. 더 넓게 보아 항산화 관련 실험도 괜찮습니다. 추천 부탁드립니다.

안녕하세요. 다름이 아니라 GC 사용하고 있는 유저로서 질문 사항이  있습니다. GC에서 Oven은 컬럼, 시료 주입기 및 검출기의 각 부분의 온도 를 조정할 수 있는 항온 장치로 쓰이며, 주로 온도(tem.)와 샘플 분석 시간(time)에 영향을 미친다고 알고 있습니다. Inlet[capillary]는 샘플 주입의 전반적인 carrier gas나 기화 온도(tem.), 유량(flow),분할 or비분할 주입 (Split ratio),pressure 등 다양한 주입관련 기능을  가지고 있다고 알고 있습니다. 결정적으로 각각의 critical error를 찾아내야하는데 갑자기 두가지의 상관관계에 대해서 자세히 알고 싶어서 질문 드립니다. 혹시 그외에도 critical error에 관련하여 OVEN, Capillary 및 FID에 대해  서술해주실 수 있는 분 있으면 답변 부탁 드립니다.    

분광광도계 사용시 큐벳의 거친면이 빛을 향하게 되면 흡광도가 정상일 때와 비교했을 때 감소하는게 맞나요?

수용성 성분과 지용성 성분을 포함한 리포좀이 물에 함께 녹아있을 때, 각각의 성분 함량을 UV로 측정하려 합니다. (흡수 파장은 두 물질이 아예 다릅니다) 기존 논문에서 지용성 리포좀 내부 물질 함량 측정 시 유기 용매로 리포좀을 깨고 UV를 찍던데, 이 경우에는 용액(물+수용성물질+지용성리포좀)에 유기용매를 넣고 바로 UV를 찍으면 될까요? 제가 아직 실험 초보라 ㅜㅜ  너무 쉬운 질문이지만 답변 부탁드리겠습니다..!!