아스피린 합성 실험을 진행하여 합성한 아스피린을 시험관에서 꺼내는 과정에서 쇠막대를 사용했었는데 일시적으로 합성한 아스피린이 진한 분홍색을 띠었다가 사라지더라구요 합성한 아스피린에는 아직 완전히 합성되지 못한 살리실산이 남아있는데 살리실산이랑 금속이온이 만나면 킬레이트 화합물을 만들고 짙은색을 띤다고 하는데 염화철(3가철,,?)과 살리실산이 반응하면 짙은 보라색이니까,, 분홍색을 띠는 이유가 궁금합니다ㅜ 혹시 2가철과 반응하면 분홍색을 띠나요,,?  

1. STD1,STD2,SMP를 만드는 시험법에서 3개 각각에 일정 농도의 검액 15mL를 넣고 (STD1, STD2에만 표준이온 일정량을 넣고) 물로 희석해서 25mL를 만드는 시험법이 있는데 표준액의 ppm을 검액의 농도 x mL 해서 검체의 mg수를 총 희석량인 25mL로 나눠줘서 ppm을 구했는데, 그렇게 하면 안되고 표준이온의 mg을 검체의 mg로 나눠주고 백만분율을 곱해줘서 계산해야 한다고 하더라고요. ppm이 백만분율로 계산하는법과 mg/L로 계산하는법이 있는건 아는데 어떻게 구분해서 사용해야되는건가요?? 2. 그리고 중금속 ppm이랑 일반물질 ppm이랑 계산하는 방식이 다르다는데 이건 무슨소린가요

peptide synthesis를 syringe안, RT에서 stirring을 통하여 하고있는데요 가끔 갈색반점이 시린지 표면에 자주 나타납니다. 뭐때문에 이런건지 아시는 분 계신가요?

안녕하세요, LC-MS로부터 나온 데이터를 살펴보다가 궁금한 점이 생겨서 글을 남기게 되었습니다. 개념적인 질문이라 카테고리를 고민하다가 실험쪽에 올렸는데 혹시 맞지 않다면 말씀해주시기 바랍니다! 분석화학쪽을 전공한 게 아니라서 논문이랑 유튜브 보면서 공부하고 있는데, 아래에 있는 이미지에서 헷갈리는 부분이 있습니다. ( https://en.wikipedia.org/wiki/Liquid_chromatography%E2%80%93mass_spectrometry)   1. 분자(t1~t4)마다 esi를 통해 이온화되어 intensity ~ m/z spectra (빨노초파) spectra를 생성하는 것으로 이해했는데, 일반적으로 'relative' intensity로 y축을 표현하면 모든 최고점 peak은 같은 높이(100)로 보이는게 맞나요? 위키에 있는 이 이미지는 상대적인 값이 아니라서 분자마다 제일 높은 peak이 다른 것이라고 이해하면 될까요? (정확히 말하자면 t1~t4는 peak이 찍힌 retention time t1~t4라고 이해했는데 편의상 분자라고 칭했습니다. 혹시 틀렸다면 정정해주심 감사하겠습니다!) 2. 빨노초파 m/z spectra가 합쳐져서 왼쪽 단면에 있는 보라색 peak으로 합쳐지는 건가요? 아니면 LC에서 보라색 픽들을 확인한 다음에 이들을 빨노초파로 분석해서 무슨 분자인지 체크하는 건가요? 3. 위의 질문에서 이어지는 질문인 거 같습니다만.. ToF 방법이 pump에 의해 column에서 분자가 날아오는 시간(retention time)을 측정하는 것으로 알고 있는데요, intensity가 detector에 분자가 부딪힌 강도?라고 하면 그게 무엇을 의미하는 지 잘 모르겠습니다.. 물질의 농도가 peak 'area' 면적이면 무거운 분자일수록 묵직하게 부딪히니 peak이 높게 찍히는 건가요?  4. 저는 m/z spectra에서 가장 큰 m/z를 가지는 peak이 해당 분자고 이온화된 파편(왼쪽 peaks)로 구조를 파악한다고 생각했는데, 아래 에탄올 예시에서 47로 찍힌 건 왜 그런건가요? 동위원소?같은 건가요?   긴 글 읽어주셔서 감사합니다!

CuSO4 5H2O 로 0.5M CuSO4 용액을 만드려고 합니다. 그런데 제가 예전에 배우기로는 CuSO4 5H2O의 몰질량/ CuSO4 몰질량 을 한 뒤 CuSO4 5H2O 의 몰질량에 이를 곱해 1M의 몰질량을 계산을 하였습니다. 음..수치로 말씀드리면 CuSO4 5H2O 몰질량= 249.609 CuSO4 몰질량 = 159.609  CuSO4를 만들기 위한 필요한 1M 기준 양 = 249.609 * 249.609/159.609 = 389.358g/L  그런데 최근에 다시 구글링을 해보니 CuSO4와 CuSO4 5H2O의 몰수비가 같으므로 249.609g/L을 1M로 보아 용액을 만들더군요. 무엇이 맞을까요..? ㅠㅠㅠㅠㅠ

안녕하세요 Waters 사 UPLC 운용중인 사람입니다.   현재 UPLC 사용 종료 후 Stop flow 하였음에도 압력값이 -50~50 psi 정도로 0이 되질않고 계속 바뀌어서 전원을 off 하고 있는데   혹시나 그냥 켜두는게 맞는지   아니면 off 해두고 다음날 on 하는게 맞는지 궁굼해서 질문 올립니다.

gc를 찍을 샘플이 피리딘과 tms 를 사용해서  유도체화를 시켰는데 세척용매는 어떤용매로 해야하나요?  

안녕하세요 sterigmatocystin을 추출 및 분석하고 싶어서 프로토콜을 찾고 있는데, aflatoxin B1의 전구체라고 나와있어 혹시 프로토콜도 같이 써도 되는지 궁금합니다.

안녕하세요! 제가 fungi의 sterigmatocystin을 추출하게 되었는데 프로토콜을 확인하니 질소건조 과정이 있었습니다. 그런데 질소건조기가 없어 이 과정을 드라이오븐과 같은 일반건조로 대체해도 되는지 궁금합니다.

안녕하세요. 저는 기름의 종류에 따른 비누에 대해 탐구 중인 고등학교 2학년 학생입니다. 탐구를 하던 중 해결되지 않는 궁금한 점이 있어 이 글을 작성하게 되었습니다. 탐구 중 오일 종류에 따른 비누의 특징을 정리해놓은 표를 보았는데 그 표에서는 코코넛 오일과 팜 오일이 단단한 편이라고 소개되어 있었습니다. 그러나 탐구를 하던 중 코코넛 오일과 팜오일은 아이오딘값이 낮으며 기름 분자 구조 내의 이중 결합 개수와 아이오딘값은 비례 관계에 있음을 알게 되었습니다. 여기서 든 궁금증은 '단일 결합보다는 다중 결합이 결합 엔탈피에 의해 결합이 강하며 끊기 어려운데 왜 아이오딘값이 낮은 코코넛 오일과 팜 오일은 단단한 편일까?'였습니다. 이 질문에 대한 자문을 요청드립니다. 바쁘신 와중에 읽어주셔서 감사드립니다.

Sterigmatocystin 추출 과정에서 질소 건조 과정이 포함되어있는데 산화 때문에 포함된건지 그래서 다른 과정을 사용해도 되는건지 아닌지 궁금합니다.

고3 한약재에서 천연항생물질 추출 후 향균 효과 실험하려고 합니다 문제는 페이퍼 디스크와 황색포도당구균이 없는데 하루빨리 실험을 진행해야 하는 상황입니다 ㅜㅜ 이외의 준비물은 모두 준비되어있으나 예산 지원 시기를 놓쳐서 저 둘만 합쳐도 10만원을 훌쩍 넘더라고요.. 현재 사비를 들여야하는 상황인데 한약재랑 배지도 이미 사비로 산 상황이라 부담이 큽니다.. 혹시 페이퍼디스크 대신에 거름종이를 이용하고 황색포도상구균 대신 손이나 변기 등으로부터 황색포도상구균을 검출해서 이용해도 될까요?? 정확한 실험결과는 기대하기 힘들겠지만 사놓은 준비물들이 아까워서 이렇게라도 진행해보고자 합니다 혹시 좋은 아이디어가 있을지 여쭤봅니다 ㅜㅜ 감사합니다

결과를 내기 위해서 Flux 값과 KP 값을 구해야 하는데 어떻게 구해야할지 모르겠습니다.

파스의 작용 원리에 대해 조사하고 있는 학생입니다.   일반적인 부착형 파스에 삼투압의 원리가 적용되어 있다고 알려져 있는데,   그 자세한 원리가 궁금합니다.   삼투는 저농도에서 고농도로 물이 이동하는 것인데, 어떻게 고농도인 파스에서 약물이 저농도인 체내로 들어가는 것인지 궁금합니다.

시료 전처리를 어떻게 해야하나요? 식약처 고시에도 따로 없고 1g에 1ml EtOH나 용매 섞어서 이것을 원액으로 간주하여 사용하면 될까요? 잘 녹지 않는다면 비율 맞춰서 용량 늘리는 식으로 하면 될까요? 완제품 제형 으로는 실험 처음 해봐서 고수님들 답변 부탁드립니다 ㅠㅠㅠㅠ

안녕하세요 연구원 선배님 에탄올(99%)로 물질 추출 후 회전 감압 농축기에서 회수한 용매는 재사용가능한가요? 혹은 물로 희석해서 소독용 에탄올로 사용 못하나요? 성분이 혹시 변하는지도 궁금하네요. 너무 아까워서 그럽니다. 감사합니다.

찾아보니 전분소화력, 단백소화력, 지방소화력이 있던데, 이중 고등학교에서 그나마 하기 쉬운 실험이 무엇인가요..? 페링시약 만들어서 전분소화력 실험 하고 싶은데 재료를 간소화 시켜서 간단하게 할 수 있는 방법이 있을까요?

온도가 효소의 반응 속도에 미치는 영향을 탐구하기 위해서, 감자 (카탈레이스 효소) 를 통해 실험해 보았습니다. 감자 조각을  2도, 35도, 80도의 용액에 투여했는데, 80도의 용액에서 감자가 완전히 가라앉지 않고, 살짝 가라앉았다가 바로 떠올랐습니다. 감자를 완전히 가라앉게 하는 방법은 없을까요?   저는 감자의 밀도가 너무 작아서 가라앉지 않은 것 같아, 감자 조각을 더 크게 잘라서 실험해 보았는데, 여전히 가라앉지 않더라구요. 

배당체가 글루코시데이스에 의해 가수분해되는 것과 관련하여 프로폴리스에 아밀레이스와 셀룰레이스, 증류수를 넣어서 가수분해의 여부에 따른 dpph 라디칼 소거능을 비교했습니다. 글루코시데이스를 넣었을 때 라디칼 소거능이 낮게 나왔는데, 이게 이론적으로 맞는 현상인가요??

저희 고등학교 활동 중 농부활동이 있어서 제가 기른 열무, 브로콜리, 시금치 + 민들레로 엽록소 분리실험을 하려합니다. 제 진로가 약학, 화생공, 생공 인데 탐구 동기가 잘 잡히지 않아서 질문드려요,, 엽록소 분리실험의 목적이나 의의는 무엇인가요?