바이오센서 플랫폼을 디자인하는 중입니다. 여러 종류의 nanostructure 위에 ssDNA (20bp) 를 고정시키고, 이 ssDNA 와 complementary 한 ssDNA 프로브 (20 bp) 를 붙여서 ssDNA-nanostructure 고정 효율을 비교하는 실험인데, ssDNA probe 디자인에서 좀 막히네요.   고정된 DNA에 probe DNA가 붙은 뒤 곧바로 발색을 볼 수 있게 디자인하려 합니다. 하지만 quencher 등과 같은 추가적인 enzyme reaction 이 필요한 방법이 주로 검색이 되네요.   그냥 심플하게 DNA proble에 발색물질 labeled 된 시스템은 뭐라고 해야 검색이 되나요?   간단히 말하자면, Nanostructure-ssDNA-ssDNA_probe_labeled --> 발색 이런 시스템을 만들고싶습니다. 도움 부탁드립니다.

phytochemical을 이용해 항당뇨 실험 중입니다. sample과 enzyme을 20분간 pre-incubation 후 substrate를 넣고 30분 간 반응시킨 후 흡광도를 찍습니다. 이렇게 30분 반응 후 일부 chemical은 석회수 녹인 것처럼 뿌옇게 변해서 흡광도 찍기가 어려워지는데 이건 무슨 이유인가요?

안녕하세요, BRIC에서 많은 정보 얻고있는 학생입니다. 차아염소산나트륨 농도에 따른 살균력 효과 비교 실험을 진행하고 있는데요.. 배지에 곰팡이와 박테리아 배양 까지는 성공했는데, 막상 살균제를 적용해서 결과 확인을 하려니 막막하더라구요. 아마도 AOAC 희석법으로 진행해야 할 것 같은데 ① 집에서도 '중화' 단계를 진행이 가능한 방법이 있는지, ② 중화 단계를 스킵하고 진행해도 될 지 궁금합니다. 각 코니컬 튜브에 농도별 살균제를 일정량씩 넣고 배양된 균의 배지를 같은 크기로 잘라 넣어 살살 흔든 후 일정시간 방치 후에 도말하여 배양된 콜로니를 세어보려고 하는데(CFU/mL) ③ 이렇게 진행해봐도 괜찮을까요? 실험방법에 문제가 있는 것은 아닌지 걱정입니다. 많이 미숙하지만 꼭 좀 조언 부탁드리겠습니다. 감사합니다.

안녕하세요  총페놀 관련해서 질문드립니다. 최종적으로 mg GAE/100 g sample의 값을 알아보려고 합니다. 샘플 3000mg + 20ml 에탄올로 추출 후 2ml로 농축하여 10배 희석한 샘플을 사용하였습니다. 샘플농도는 150mg/ml, 희석배수는 10 garlic acid(mg/ml)로 스탠다드 커브를 그려 대입 후 0.05의 값을 얻었습니다. 이후에 계산식을 모르겠습니다... 농축 샘플 0.5mg/ml 갈산이 들어 있고 이후에 계산식을 모르겠습니다... 부탁드립니다. ㅠㅠ  

쳔연물 분석하는 학생입니다. Sephadex를 걸어서 단일물질로 분리하고자 하는데 해당 물질이 DMSO에 밖에 녹지 않습니다. Sephadex를 걸 때 DMSO를 사용해서 Sample 제작해도 괜찮은지, 가능하다면 50mg을 기준으로 할 때 어느정도의 DMSO사용이 가능한지 여쭤보고싶습니다.

화학관련이라 여기에 질문해도 될지 모르겠는데... 질문할 곳이 없어서 올려봅니다 ㅠㅠㅠㅠ 유기용액에서 발생시킨 수소를 gas chromatography로 분석하려 하는데요... 그걸 위해서 수소기체를 포집해야 하는데 어떤 방식으로 해야할지 모르겠습니다 ㅠㅠㅠㅠ 도와주시면 너무 감사하겠습니다...

hplc로 polyphenol standard를 찍고있습니다 gallic acid 와 p-coumaric acid 등을 찍고있는데 몇일전 찍었던 피크와 오늘 찍은 피크의 retention time이 좀 차이가 있는데 어떤부분의 영향이 미쳤을까요...?? 컬럼 세척을 충분히 하고 블랭크로도 두어번찍고 진행하였는데 이러네요 용매는 methanol : 0.1 phosphoric acid(water)를 3:7로 하여 컬럼온도 40도로 설정하여 C18 컬럼이용하여 1ml/min으로 설정하였습니다

효소 저해활성 kinetic 분석 결과가 처음보는 형태여서 질문드려요. V0 구한 다음에 sigma plot의 kinetic으로 분석한 결과입니다. 라인위버버크 플롯을 보면 100 uM까지는 그래도 uncompetitive같은 방식인데 200 uM까지 보니 처음보는 형태로 나왔습니다. 보통 mixed type은 -x, +y 절편에서 교차하던데 이렇게 -x, -y에서 교차하는 타입은 어떤 형식인가요?

1. STD1,STD2,SMP를 만드는 시험법에서 3개 각각에 일정 농도의 검액 15mL를 넣고 (STD1, STD2에만 표준이온 일정량을 넣고) 물로 희석해서 25mL를 만드는 시험법이 있는데 표준액의 ppm을 검액의 농도 x mL 해서 검체의 mg수를 총 희석량인 25mL로 나눠줘서 ppm을 구했는데, 그렇게 하면 안되고 표준이온의 mg을 검체의 mg로 나눠주고 백만분율을 곱해줘서 계산해야 한다고 하더라고요. ppm이 백만분율로 계산하는법과 mg/L로 계산하는법이 있는건 아는데 어떻게 구분해서 사용해야되는건가요?? 2. 그리고 중금속 ppm이랑 일반물질 ppm이랑 계산하는 방식이 다르다는데 이건 무슨소린가요

CuSO4 5H2O 로 0.5M CuSO4 용액을 만드려고 합니다. 그런데 제가 예전에 배우기로는 CuSO4 5H2O의 몰질량/ CuSO4 몰질량 을 한 뒤 CuSO4 5H2O 의 몰질량에 이를 곱해 1M의 몰질량을 계산을 하였습니다. 음..수치로 말씀드리면 CuSO4 5H2O 몰질량= 249.609 CuSO4 몰질량 = 159.609  CuSO4를 만들기 위한 필요한 1M 기준 양 = 249.609 * 249.609/159.609 = 389.358g/L  그런데 최근에 다시 구글링을 해보니 CuSO4와 CuSO4 5H2O의 몰수비가 같으므로 249.609g/L을 1M로 보아 용액을 만들더군요. 무엇이 맞을까요..? ㅠㅠㅠㅠㅠ

안녕하세요 Waters 사 UPLC 운용중인 사람입니다.   현재 UPLC 사용 종료 후 Stop flow 하였음에도 압력값이 -50~50 psi 정도로 0이 되질않고 계속 바뀌어서 전원을 off 하고 있는데   혹시나 그냥 켜두는게 맞는지   아니면 off 해두고 다음날 on 하는게 맞는지 궁굼해서 질문 올립니다.

gc를 찍을 샘플이 피리딘과 tms 를 사용해서  유도체화를 시켰는데 세척용매는 어떤용매로 해야하나요?  

안녕하세요. 저는 기름의 종류에 따른 비누에 대해 탐구 중인 고등학교 2학년 학생입니다. 탐구를 하던 중 해결되지 않는 궁금한 점이 있어 이 글을 작성하게 되었습니다. 탐구 중 오일 종류에 따른 비누의 특징을 정리해놓은 표를 보았는데 그 표에서는 코코넛 오일과 팜 오일이 단단한 편이라고 소개되어 있었습니다. 그러나 탐구를 하던 중 코코넛 오일과 팜오일은 아이오딘값이 낮으며 기름 분자 구조 내의 이중 결합 개수와 아이오딘값은 비례 관계에 있음을 알게 되었습니다. 여기서 든 궁금증은 '단일 결합보다는 다중 결합이 결합 엔탈피에 의해 결합이 강하며 끊기 어려운데 왜 아이오딘값이 낮은 코코넛 오일과 팜 오일은 단단한 편일까?'였습니다. 이 질문에 대한 자문을 요청드립니다. 바쁘신 와중에 읽어주셔서 감사드립니다.

결과를 내기 위해서 Flux 값과 KP 값을 구해야 하는데 어떻게 구해야할지 모르겠습니다.

시료 전처리를 어떻게 해야하나요? 식약처 고시에도 따로 없고 1g에 1ml EtOH나 용매 섞어서 이것을 원액으로 간주하여 사용하면 될까요? 잘 녹지 않는다면 비율 맞춰서 용량 늘리는 식으로 하면 될까요? 완제품 제형 으로는 실험 처음 해봐서 고수님들 답변 부탁드립니다 ㅠㅠㅠㅠ

온도가 효소의 반응 속도에 미치는 영향을 탐구하기 위해서, 감자 (카탈레이스 효소) 를 통해 실험해 보았습니다. 감자 조각을  2도, 35도, 80도의 용액에 투여했는데, 80도의 용액에서 감자가 완전히 가라앉지 않고, 살짝 가라앉았다가 바로 떠올랐습니다. 감자를 완전히 가라앉게 하는 방법은 없을까요?   저는 감자의 밀도가 너무 작아서 가라앉지 않은 것 같아, 감자 조각을 더 크게 잘라서 실험해 보았는데, 여전히 가라앉지 않더라구요.