안녕하세요! balb/c mouse 모델로 아토피 실험 진행중인 대학원생입니다. 아토피 관련 논문들 보다 보니 해부 시 림프절 크기도 많이 비교하더라구요 mouse 림프절의 종류가 다양한 것으로 알고있는데 아토피 실험에서 주로 보는 림프절이 따로 있는것인지  아니면 떼기 편한 림프절을 떼는 것인지 궁금해서 질문 올립니다!! 혹시 관련 실험을 진행해보셨다면 어느 위치의 림프절을 보셨는지 공유 부탁드립니다 감사합니다!!!

A라는 추출물의 효능평가와 기전탐구를 만성 염증 관련 동물모델을 통하여 진행하였습니다. A라는 추출물의 효능평가와 기전탐구에 앞서, A의 추출물과 각 분획의 항산화 활성과 플라보노이드, 페놀 함량을 측정하였는데, 부탄올, 헥산 분획, 추출물 순으로 활성과 플라보노이드 페놀 함량이 높게 나타났습니다.  그리고 저는 분획의 항산화 효능과 플라보노이드, 페놀 함량이 높으나 각 분획의 효능이 보고되어있지 않고, 면역 강화 효과를 가지는 분획이 있을 수 있으며, 추출물의 항염 효과가 이미 보고되어 있기 때문에 총 추출물의 효능 평가가 선행되는것이 안전하다고 판단하였습니다. 이때 궁금해진것이 추출물의 효능평가가 성분의 효능평가보다 선행하는것이 혹시 routine 한것인가 하는 궁금증이였는데요. 선배님들의 좋은 답변 기다리고 있겠습니다.    

안녕하세요. 혈관신생 연구를 하다가 의문점이 있어서 질문드립니다. 저희가 어떤 특정 물질을 혈관신생 억제 물질로 기대를 하고 동물실험을 진행  하려고 하는데요. 논문들의 method를 보면 특정 물질 + matrigel을 섞어서 마우스에 주사하는것 또는, 특정 물질을 처리한 cell + matrigel을 섞어서 마우스에 주사하는것 두종류의 방법들이 나왔는데요. 물질 처리한 세포를 matrigel이랑 섞어서 주사한는거랑 물질을 matrigel이랑 섞어서 주사하는거랑 무슨 차이가 있나요? cell이 있고 없고가 큰 차이가 있나요? 저희가 생각하는 cell은 HUVEC 입니다. 제발 연구원님들 꼭 답변 좀 부탁드립니다.

안녕하세요 balb/c mouse 모델로 아토피 유발 실험중인 대학원생입니다. 현재 실험 진행중이며 곧 해부를 생각하고있는데 mouse의 털 자라는 속도가 너무 빠르더라구요 바리깡이랑 제모크림으로 제모 후 실험 시작했는데 지금은 꽤 많이 자란상태입니다.  이런경우 해부 시 제모크림과 바리깡 이용해서 제모 후 피부 조직을 취하는게 맞는 방법일까요? 제모크림이 실험 결과에 영향을 주진 않을까요? 다들 balb/c mouse 모델 사용해서 아토피 실험 시 피부조직 취하는 방법 공유해주시면 감사하겠습니다!! 

안녕하세요. 마우스 혈관신생 연구를 하고 있는데요. matrigel plug assay에 진행할 제품이 이게 맞는지 여쭤보고 싶어서 질문드려봅니다. 제품 : Matrigel® Basement Membrane Matrix, LDEV-free 입니다. 

자가면역질환 동물모델을 이용한 후보물질의 효능 평가를 비임상 CRO를 통해 진행하였습니다.  음성대조군, 양성대조군을 포함하여 시험물질 3가지 용량 (3mpk, 10mpk, 30mpk)를 2~3주 1회/1일 경구투여하여 효능 여부를 확인하였습니다.  임상학적 평가, H/E 염색을 포함하여  몇 가지 조직형태학적 평가를 진행했는데, 양성대조군은 문제없이 효능이 확인되었습니다. 그런데 시험물질 3가지 용량의 경우 대조군 대비 모두 통계학적으로 유의미하게 효능 있음은 확인되었지만, 3가지 용량군간에는 의미있는 차이는 없었습니다.  동물모델을 이용하여 후보물질의 용량 의존적인 효능 결과 확보가 필요한데 이 문제점을 어떻게 해결하면 좋을까요?   도움을 요청 드립니다. 고맙습니다.   

저희 실험실에서 cross-fostering을 하게 될 것 같은데요. 웬만한 논문들에서는 쥐들의 mating 시기와 새끼를 낳는 기간이 거의 비슷하더라고요. 근데 저희가 사용할 쥐가 mating을 잘 하지 않는 습성이 있어서 시기를 비슷하게 맞추기가 어려울 거 같더라고요. 그래서 transgenic 마우스가 새끼를 낳는 그 날에 태어나는 WT 마우스의 새끼를 받아오는 것이 가능한 업체가 있나 궁금하네요.. 없으면 아쉬운 대로 1일령을 쓰든지 해야겠지만요.

일반적으로 실험 동물 사용시 여성호르몬의 보호효과로 인하여 이를 배제하기 위해 수컷으로 실험하는 걸로 알고 있습니다. 제가 이 실험을 기획할때, DSS의 농도가 정해져있지 않아 농도확립을 위한 실험을 하여야 하고, 유도시 마우스가 희생되거나, 유도되지 않는 경우도 많다는 것을 확인하고 암컷이 DSS에 저항성을 가져 보다 높은 농도에서 유도되며, 수많은 논문에서 암컷을 실험동물로 쓰는것을 확인한 후, 암컷으로 실험을 진행하였습니다.  그런데 왜 수컷으로 실험하지 않았느냐는 질문이 들어왔을 때 대답할 수 없었습니다. 생각해보면 여성호르몬의 보호효과는 사라지지 않았고, 심지어는 estradiol이 보호효과를 보인다고 논문화 되어있더군요. 실험에서는 변수를 줄이는게 기본이고.. 그래서 암컷 사용을 지양해야 하는데도 불구...  이런 기본적인 문제가 존재함에도 어째서 암컷으로 실험한 논문이 많은지 그 이유가 궁금합니다.   

안녕하세요 동결 절편 제작을 하려고 방법을 찾아보던 중에 검토받아보고자 질문 남깁니다.   1. 장기 절단 2. 고정(10% NBF) 24시간 3. 10% sucrose/0.1 M PBS 4도씨 4시간 4. 15% sucrose/0.1 M PBS 4도씨 4시간 5. 20% sucrose/0.1 M PBS 4도씨 하룻밤 6. 동결포리 (드라이아이스) 7. crystat 절편 8. 냉풍건조 실온 1시간 9. 세정 5분간 3회   이러한 과정으로 진행하려고 하는데 궁금한건 20% sucrose 처리 후 세척과정은 따로 필요하지 않은건지 궁금해서 질문 남깁니다.  감사합니다.

고정틀 사용이 불가능하며, 따라서 마취 후에 IV 투여가 필요한 상황입니다. 마취를 하면 혈류가 약해 보이던 혈관도 잘 안보인다던데 블랙 마우스를 마취를 하면 꼬리 혈관을 찾을 수 있을지 걱정입니다.   혹시 경험있는 분이 계실까요? 아니면 도움이 될만한 Tip 이 있을까요?  

rat brain으로 paraffin block을 제작하려고 하는데 처음 해보는거고 물어볼 사람이 없어서 이곳에 질문을 남기게 되었습니다ㅜ 인터넷에 올라온 여러 protocol을 참고해서 진행중인데 탈수과정에서 '70% 에탄올 1시간 ➡️ 80% 에탄올 1시간 ➡️ 95% 에탄올 1시간 30분 ➡️ 100% 에탄올 1시간 30분 ➡️ 100% 에탄올 1시간 30분' 이렇게 하라고 되어있는데 여기까지 하면 퇴근 시간이 되서요... 100% 에탄올에서 overnight 해도 괜찮을까요...? 그리고 다음 과정이 '크실렌 + 100% 에탄올 1대1로 1시간 ➡️ 크실렌 1시간 ➡️ 파라핀+크실렌 1대1로 2시간 ➡️ 파라핀 1시간 ➡️ 파라핀 overnight' 이라고 되어있는데 파라핀 과정을 생략하고 바로 embedding 해도 될까요?? 파라핀을 녹일 곳이 마땅치가 않아서요ㅠㅠ dry oven은 없고 water bath는 있는데 이걸로도 가능할까요?ㅠㅠ

안녕하세요. 이제 막 논문을 읽기 시작한 대학원생입니다.. ko mouse와 관련된 논문만 읽다가 flox, cre의 아직 기본적인 개념을 모르겠어서 질문 남깁니다.   우선 논문에는 총 4가지의 mouse가 나오는데 CD47 KO, CD47 f/f, CD47 ΔIEC, CD47 ERΔIEC입니다. CD47 ΔIEC 은 villin-cre, CD47 ERΔIEC는 villin ERT2-cre로 설명하고 있습니다.    이 4가지가 어떻게 다른가요? 기초적인 질문이지만 여쭤볼곳이 없어서 남깁니다.. 

안녕하세요. 동물실험을 계획 하는 중에 궁금한게 있어서 여쭤봅니다. 살아있는 동물에 어떠한 물질을 넣었을때 동물 내 물질을 검출 할 수 있는 방법을 알고 싶어서요... 예를 들어 형광 물질을 살아 있는 동물에 넣었을때 살아 있는 채로 동물 조직내에서 물질을 검출 할 수 있는 방법이 어떤게 있는지요? 추가적으로 Matrigel plug assay를 진행하였을때 Matrigel이랑 특정 검출 하려는 물질을 섞어서 살아 있는 마우스에 투여했을때 살아 있는 마우스 내에서 특정 물질을 검출 할 수 있는 방법을 여쭤봅니다.

안녕하세요. Muscle에서 insulin signaling을 보기위해 마우스 모델을 사용하여 인슐린 주입 후 근육조직을 isolation하여 western blot을 돌리려고 합니다. 보통 이런 경우 인슐린을 어디로 주입하시나요? 문헌을 찾아보니 vena cava, hepatic portal vein, IP 등 다양합니다. 경험자 분들이 계신신다면 알려주시면 감사하겠습니다!

안녕하세요 in vivo tumor injection 해서 종양을 키우고 있는데 CT26cell 1.5×10^6개을 주입 하고 2주가 지났습니다. 종양 크기가 100mm3정도 된것같아 tumor isolation 하고 확인했는데 종양 세포가 아닌 전부 염증 덩어리 였습니다. 거의 대부분의 마우스가 이런데 혹시 무엇이 문제였을까요? 아무리 찾아봐도 이런 경우는 나오지 않네요,,, 제발 도와주세요ㅠㅠ

안녕하세요. VEGF을 이용해서 Matrigel plug assay에 대해 공부를 하고 있는 학생입니다. 실험설계에 대해 공부 좀 하고 싶은데 혹시 관련 논문이나 Matrigel plug assay에 대한 프로토콜 가지고 계신분 공유 좀 해주시면 감사하겠습니다.