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 카테고리: 전체 > Laboratory Animals > Histology/Pathology
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Q. mouse의 tumor 생성 정도에서 weight loss 여부가 중요한 이유가 궁금합니다.
mouse에서 특정 cell의 inoculation 여부에 따라 tumor의 생성 정도를 비교하는 실험입니다. 이때, 왜 mouse간의 weight loss가 관찰되지 않는 것이 중요한지 궁금합니다.   *원문: Based on the above findings, we conducted peritoneal dissemination model experiments using OCUM-2MD3 cells to evaluate the role of S-CAFs in the development of peritoneal dissemination in vivo. The peritoneal tumors of OCUM-2MD3-inoculated mice treated with S-CAF-CM for 30 days were significantly larger than tumors from the other two groups, and weight loss was not observed (Figures 5A and S6A).
회원작성글 옵몽이  |  07.21
Q. hemorrhage (clot)이 생긴 brain을 포르말린으로 고정할 수 있나요?
안녕하세요,   Subarachnoid hemorrhage (SAH)를 rat에게 유발 중입니다.   만든 뒤에 brain을 포르말린 (4% PFA)에 고정하는데요,   brain을 skull에서 분리하여 포르말린 통에 넣으면 뭔가 clot에 붙은 혈액이 미세하게 포르말린에 희석되는 느낌이에요.   그리고 포르말린 통에서 건져낼 때에도 clot이 잘 분리되어서 조심히 다뤄야 하고요.   그래서 쥐 머리 통째로 (brain을 분리하지 않고) 포르말린에 담궈버릴까 생각하고 있는데요,   혹시 괜찮은 방법일까요?
회원작성글 =ㅅ=  |  07.13
Q. 마우스 근육세포 diameter 첨부파일
안녕하세요 근감소증 마우스 모델로 실험중인 연구원입니다. 근육조직 고정 후 H&E염색한 사진인데요, 근육 세포(muscle fiber, 근육 섬유)의 diameter을 측정하고자 하는데 근육 세포가 원이 아니고 타원형이나 다각형을 띄고 있으며 사진과 같이 장축과 단축의 차이가 큰데 어떤 것을 diameter라고 하는지요? 근육 실험 관련하여 유경험자분들 알려주시면 감사하겠습니다.
회원작성글 jeongjjang..  |  05.09
Q. tissue sectioning 실험 buffer 관련 질문드립니다.
    안녕하세요. 처음으로 마우스 실험을 진행하다보니 궁금한게 있습니다. 마우스 실험 후 부검하여 조직을 확보한 후에 paraffin section을 진행하여 H&E staining 단계를 진행하려고 합니다. 마우스 실험 후 각 tissue를 formaldehyde fixation을 진행하고, 아래의 프로토콜을 이용하여 조직을 준비하였습니다. 현재 70% ethanol에 있는 상태 입니다.  https://med.nyu.edu/research/scientific-cores-shared-resources/sites/default/files/nyu-histocoresample-prep-paraffin.pdf   제가 직접 sectioning을 진행할 수가 없어서 다른 기관에 의뢰를 하려고 하는데, 그쪽 기관에서는 포르말린에 고정되어있는 조직을 보내야한다고 합니다. 70% ethanol을 제거하고 바로 포르말린에 다시 넣어도 괜찮을까요? 아니면 xylene으로 넣어서 보내야할까요?   답변 부탁드립니다.      
회원작성글 신우리  |  04.06
Q. 파라핀 섹션을 했는데, 이상해요 첨부파일
안녕하세요.  제가 이번에 근육을 가지고 파라핀섹션을 했는데요.  근육을 분리하여 4% formalin에 1일 정도 fixing하고 수세를 2일정도 한 후에 processing기계에 넣어서 프로세싱 돌린 후에 꺼냈을 때 겉 색이 푸르스름한 빛을 보였고, 유난히 쪼그라든 모습이였습니다. 원래 이런가요?  모양이 못생겼지만 그래도 혹시나 하여 이후에 parrafin 블락을 만들어서 썰어봤는데 내부에 갈라짐이 심했습니다.  이럴 때 어떤 과정을 바꿔보아야 할까요?     
회원작성글 꺄아악013  |  03.22
Q. Tumor tissue H&E staining
안녕하세요. 마우스 등에 DU145 prostate cancer를 이식해서 xenograft 마우스 모델을 만들었습니다. 이후 tumor tissue를 sampling한 후, H&E statining을 하였는데,  아래 사진과 같이 blood vessel 또는 gland 같은 것들 발견되었습니다(하얀색 dash line) 정확이 어떤건지 잘 판독이 되지 않아 문의드립니다! 그리고 동일한 실험에서 세포주만 HepG2 Hepatocarcinoma로 바꿔서 했는데, 아래와 같이 비슷한 morphology가 관찰되더라구요.. 이것도 혹시 뭘 의미하는지 알려주시면 감사하겠습니다!
회원작성글 대학원생인가노예인가  |  2021.12.02
Q. 마우스 미생물 모니터링 서비스
실험용 마우스를 몇마리 키우려고 합니다. 자주는 아니어도 1년에 한두번은 미생물 모니터링을 했으면 하는데요, 구글에 검색해보니 가이드라인은 많이 나오는데 직접 할 상황이 아니라..ㅠㅠ 출장방문하셔서 시료 채취부터 분석까지 전부 해주시는 업체가 있을까요? 가격은 대략 어느 정도인지 아시는 분 계시면 답변좀 부탁드립니다.
회원작성글 괜찮아  |  2021.11.10
Q. mouse small intestine에서의 goblet cell이 많다는 것은 무엇을 의미하나요,,?
mouse small intestine에서의 goblet cell이 많이 관찰되었는데  이는 무엇을 의미하는 것인가요??
회원작성글 고라파덕  |  2021.11.04
Q. H and E mounting 이후 문제
hh and e mounting 이후에 조직이 저렇게 검은색으로 변하는데, 몇번을 해도 똑같습니다.. 무엇이 문제일까요
회원작성글 초파리사랑  |  2021.10.22
Q. 쥐 고환과 부고환을 잇는 날세관 (efferent ductule)을 cell-culture
안녕하세요, 혹시 어떤 조언이라도 받을 수 있을까 해서 이렇게 질문합니다. in-vivo 쪽으로는 경험이 없는데요, 쥐 고환과 부고환을 잇는 날세관 (efferent ductule)을 cell-culture 어떻게 하는지, 혹시 구매할 수 있는 곳은 있느지 여쭤봅니다~ 조언 감사합니다. 
회원작성글 gpcr1004  |  2021.10.21
Q. C57bl/6J H&E 이미지 해석에 대한 설명을 부탁드립니다. 첨부파일
안녕하세요 영양학 공부를 하다가 동물실험을 하게되었는데 Pathology나 staining 쪽으로 해석하는데 어려움을 겪고 있습니다.  간, 지방조직을 H&E 이미지를 얻었습니다만, 세포크기 지방구 외에 괴사,면역 부분도 확인할 수 있는것으로 알고있습니다만, 관련 사진들도 열심히 찾아봤습니다만, 전문가가 아니라서 확신이 없네요 ㅠㅠ   - 동물 종 - C57bl/6J, 20주령,수컷 - 간 조직 - caudate lobe, 고정시간 (17~20시간) - 절식시간 - 12~15시간    1. ppt에 제가 해석한 부분이 맞는지와 2. 빨간색 동그라미 부분은 어떤의미를 가지는지 3. 세포파괴나 면역 부분을 확인할 수 있는 특징이 보이는지 아시는 분 설명 부탁드려도 될까요? 4. 세포파괴가 나타난다면 이유는 무엇인지? 글리코겐축적을 통한 파괴인지 면역,괴사같은 원인으로 인한 파괴인지... 궁금합니다.  사진은 첨부파일로 준비하였습니다. 제 설명이 충분했는지 모르겠습니다. ㅠㅠ 부탁드립니다.  감사합니다.
회원작성글 블루세실리아  |  2021.08.10
Q. IHC protocol 컨펌 부탁드립니다
paraffin embeded tissue section slide 염색하려고 하는데 -deparaffinization -antigen retrieval (citrate buffer, 95'c 30min) -Endogenouse blocking (3% h2o2, 10min) -Blocking (5% normal goat serum or 5% BSA, 1 h) -1st antibody (O/N) -2nd biotinylated goat antibody (1 h) -ABC kit (thermofisher, #32020) -DAB  -Mayer's hematoxylin -다시 dehydration (EtOH > xylene) -Mounting (xylene) 1. 이 protocol로 진행 하려고 하는데 괜찮을까요? 2. DAB이 HRP(horseradish peroxidase)와 반응하여 갈색으로 발색되는 것으로 알고있는데 지금 biontin 2nd+ABC(avidin+biotinylated peroxidase) 상태에서 ABC kit의 peroxidase가 HRP와 같은 것 인가요?
회원작성글 살려줘어  |  2021.08.04
Q. 간 oil red o staining 후 정량
안녕하세요!!  초보 대학원생입니다.  지금 간에서의 지방분화 정도를 보기 위해 oil red o를 한 상태입니다. 섹션하고 사진찍어서 데이터 정리를 하고 있습니다. 이 사진가지고 oil red o를 정량할 수 있나요? 정량하는 것이 일반적인 것인지 궁금합니다. 정량할 수 있다면, image J 프로그램을 이용해서 하는 것인가요?? 이미 실링까지 되어있는데 정량을 할 수 있는 방법이 있는지 궁금합니다. 많은 선배님들의 답변 기다리겠습니다. 오늘도 안전한 실험, 좋은 하루 보내세요!
회원작성글 으아니  |  2021.08.01
Q. 랫드 장기(비장) 냉동 후 H&E염색
랫드 장기중에 비장을 하루동안 냉동되어있었던 상태에서 포르말린 고정 후 H&E 염색을 해서 관찰해도될까요? 답변부탁드립니다ㅠㅠㅠ
회원작성글 99콘  |  2021.07.13
Q. IHC나 조직검사 관련해서 질문드립니다.
제가 조직의 혈전을 관찰해야하는데 IHC관련해서 제가 모르는 부분이 많아서 그러는데 perfusion을 하면 혹시나 혈전이 씻겨져 버리는건 아닌가 해서 질문드립니다.  
회원작성글 김풋  |  2021.06.30
Q. 마우스 안구 frozen section preparation..
안녕하세요, 현재 마우스 안구의 frozen section을 세팅중인데.. 안구 고정에는 Davidson's fixative solution이 많이 사용된다고 합니다. 4% PFA에 고정 후 frozen block 제작할 때 15%, 30% sucrose solution 담근 이후 OCT compound에 넣는 것으로 알고 있는데요. Davidson's solution으로 고정할 때에도 똑같이 15%, 30% sucrose solution 처리를 진행해야되는건가요? sucrose solution 과정이 탈수를 위함인 것은 알고 있는데, davidson용액으로 sucrose solution 처리한다는 내용은 확인하지 못해서요.. davidson 용액에 알코올이 함유되어 있어 필요가 없는건지.. sucrose solution 처리 과정은 고정액 상관없이 공통인건지 확인 부탁드려요..
회원작성글 wwasdc  |  2021.04.29
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