첨부한 사진과 같이 마우스가 부정교합이 있습니다. 이렇게 심하지 않아서 식이 잘 섭취했었는데 지난주부터 갑자기 섭취도 잘 못하고 있고, 4주령부터 8주령 될때까지 주에 3그램 정도 고르게 체중증가 되고 있었는데 8주차와 9주차 비교했을때 갑자기 2.46그램 감소했습니다. 그래서 살펴보니 아랫니가 코옆부분 피부를 뚫을정도로 길어져서ㅠㅠ 많이 아파하고 식이를 잘 못 섭취해서 그런것 같더라구요. 이런경우는 어떻게 해결할수있을까요? 마취하고 손톱자르듯 잘라주고 싶은데 더 아파할까봐ㅠ 경험에서 우러나온 고견 기다리겠습니다.

치매 연구 모델 마우스로 jackson에서 5xFAD mouse를 구입한 뒤 breeding하여 사용할 예정입니다.   jackson 측에서 안내하는 공식 breeding startegy에서는 hemizygote X F1 로 breeding을 시행하라고 나와 있는데, 여기서 homozygote를 사용하지 않는 이유가 있을까요?   그리고 hemizygote는 mutant allele을 하나만 가지고 있는 개체를 말하는 것으로 알고 있는데, F1이라는 단어는 단순히 mouse들의 첫 세대 자손을 의미하는 것인지 용어의 정확한 의미도 알고 싶습니다. 답변 부탁드립니다.

male mouse 로 실험중인데.. 초반에는 개체들끼리 싸우지 않고 잘지냇는데 최근에 한그룹에서 유독 싸움이 일어나네요 ㅠㅠ  스트레스성인가? 환경탓인가 찾아보니  다른팀  mouse 실험케이지에서 mouse 한마리가 죽어 있는데... 그냄새?? 를 맡고 싸움이 일어나는 건가요?? mouse사체만 처리하면 될까요??

DNCB로 hairless mouse에 아토피 유발 실험 진행중입니다. 1%로 일주일에 3번, 그 다음주부터는 0.5%로 일주일에 세번 실험 진행중인데 보통 이런 프로토콜의 경우 몇주차쯤 아토피 유발이 눈으로 확인 가능할까요??  

안녕하세요! HR-1 mouse로 DNCB 이용해서 아토피유발하는 과정 진행중인데 아토피 유발이 잘 진행되고 있는것인지 궁금해서 질문 남겨요! 우선 실험은 1주차에는 월,수,금 3일동안 1% DNCB 도포했고 2주차인 이번주 월,수,금 부터는 0.5% DNCB 도포 중입니다. 1주차 금요일에 각질이 엄청 올라왔었는데 주말 지나고 월요일엔 각질이 대부분 떨어져있었고 0.5% DNCB 도포 후 각질이 생기고 주름이 더 자글해진것같긴한데 DNCB 도포 하지않는 주말동안 계속 자연 치유가 일어나도 3~4주정도 DNCB 도포하면 아토피가 유발 되겠죠..? 다른 분들은 몇주차에 심한 아토피가 유발 되었는지 궁금하고 사진 첨부할테니 실험이 잘 진행되고 있는지도 한번 봐주세요!!  

안녕하세요? 마우스에 감마선 조사한 논문을 보고 실험을 해야하는데, 조사 (6.5 Gy) 4시간 후 각장기와 혈액을 뽑습니다.   궁금한것은, 방사선 조사 후 4시간이 지나면 실험자에게 피폭의 위험은 없는지요? 그리고 소동물 감마선 조사기를 구입해야하는데 국내 취급점을 모르겠네요. gamma cell Biobeam 8000 이라는 모델을 찾긴했는데 직접 물어볼만한 국내업체를 찾기 힘들어 여쭤봅니다. 방사선 조사된 동물 실험은 처음이라 모르는게 많고 두렵네요 

안녕하세요.   HOS:HR-1 이라는 hailrless mice를 가지고 UVB 조사에 의한 샘플의 피부 주름 억제와 피부 보호능을 살펴보려고 합니다.   해당하는 동물은 가만히 있지 않는다고하여 UVB 조사가 제대로 이뤄지지 않을 수 있다고 합니다.   그래서 마우스 한 마리만 들어갈만한 케이지를 찾아보는 중인데 적합한 제품이 있을까요...?    항상 도움을 주셔서 감사합니다^^

학교학술제에서 환경호르몬(비스페놀a)를 활용한 실험을 해 보려고 하는데요! 호르몬 관련 주제라 실험이 쉽지 않을 것 같은데.. 선생님께서 영수증을 물에 오래 담궈서 성분(환경호르몬)을 녹인 다음에 아드레날린과 물을 각각 물벼룩에 떨어뜨려서 심장박동 관찰하는 실험 알려주셨어요 그런데 이 실험을 한다고 해서 반응이 나타날지 모르겠어요ㅠㅜ 반응이 나타날 가능성이 있을까요? 아니면 환경호르몬의 부정적 효과를 입증할 수 있는 실험이 있을까요?

안녕하세요 실험동물 Job에 관심이 많은 대학생입니다. 관련 공부를 하다가 Mouse나 rat 보정, 채혈, 부검, 적출 자료는 많은데 응고, 방혈 자료는 많이 없더라고요. 사실 내용이 간단해서 없는건가 싶기도 한데 제가 알고 있는 내용이나 시청한 자료같은 경우에는 혈액응고같은 경우엔 blood collection시 eppendorf tube나 주사기안에 헤파 린을 넣거나 혈액에 소량의 sodium cirate, NaOH, EDTA등을 첨가해 혈액에 응고를 막아주는 방법이 있고 물리적으로는 유리봉, 유리구슬 또는 깃털로 혈액을 저어 fibirn을 제거 해주는,, 방법 까지는 알고있습니다.  Mouse 방혈같은 경우에는 장기 적출전에 보통 하는것 이고, 복부 정중선을  가위로 절개한 다음 내부장기를 한쪽으로 한다음에 뒤대정맥과 배대동맥을 노출시킨뒤 옆으로 절개한다 라고 배웠습니다. 그리고 방출되는 혈액을 티슈 등으로 눌러 흡수시키고 장기나 조직이 마르지 않도록 생리식염수를 계속 뿌려 주어야 한다고 배웠습니다. 혹시 알고있는 내용에 추가해주시거나 관련 학습영상, 실험영상 등이 있으시 면추천해주실수 있을까요? 도움 주셔서 감사합니다. : D

안녕하세요. C57BL/6N 마우스에 대장염을 유도하여 8주간의 조제사료를 급여해서 단백질발현량 및 장내균총을 확인하려고합니다.   대장염 유도 시 DSS(dextran sulfate sodium)농도가 연구들마다 많이 다른데요, 처음 2일은 2%의 DSS, 2일 후 5일 동안은 3%의 DSS를 식수 투여, 5% DSS를 5일 동안, 혹은 7일 동안, 4% DSS를 7일 동안 식수투여를 통해 대장염을 유발시키는 것으로 확인됩니다,,그런데 찾다보니 대부분의 논문들에서는 마우스 사육기간이 2~4주로 짧은 것을 확인할 수 있더라고요..! 저의 경우 8주 동안 키운 후 희생시키게 되는데요, 이 때도 앞의 방법들과 동일하게 4% DSS를 7일 동안 식수투여해 유발시켜도 괜찮을까요..?   조언 부탁드립니다..!    

두가지 gene Tg A 마우스와  B KO 마우스를 교배해서 최종적으로는 Tg A +/- / B KO 마우스를 만들려고하는데요.. 일단 저는 마우스를 Mating plug를 확인하는 법을 몰라 자주 방에 들어가서 태어났는지 확인하거나, 며칠 지나서 태어난걸 발견했으면 털의 자란 수준정도를 갖고 이날쯤 태어났겠다.로 유추하는데 보통 3~4일 정도의 오차정도가 있는것 같습니다.  제가 암튼, 3월 말쯤에 마우스 Tg A +/+ 암컷 한마리와 6주되자마자 바로 B KO 수컷 8주령과 mating을 시켰고 5월4일이 되서 새끼를 두마리 출산했습니다. (정확하진 않음) 그러다 추가로 4월 중순쯤 태어난  Tg A +/+ 마우스 암컷을 5월 중에 4~6주가 됬을때 세마리 더 투입했는데 얘들은 사실상 연령적으로 최소 5월말이나 6월은 되야지 임신이 가능할건데 배부른게 티도 나지않았구요. 근데 5월 29일 혹은 6월초에 새끼가 6마리가 또 태어났습니다.  1주일정도 오차가 있다 하더라도.. 바로 메이팅해서 바로 또 새끼를 낳을수 있나요?   (더 찾아보니 이론상 암컷은 4주부터 임신이 가능하다..라는 글도 있는데 -_-;;; 이러면 저 5월에 중간에 투입한 애들이 5월말에 새끼를 낳을순 있을 것 같긴합니다..그래도 음;;) 그래서 처음엔 저 추가로 투입한 암컷들이 Genotyping하고 분리직전에 수컷이랑 교배해버려서 Tg A 쪽 유전자만 있겠다.라고 생각을 했는데 Genotyping 결과 일단 B +/- 마우스가 전부 튀어나와서 5월에 추가로 애들이 조산했던가(...) 아니면 처음에 넣은 암컷이 거의 애를 낳자마자 또 교배를 했던가말고는 말이 안되는데...이럴수가있나요...?;;;   

안녕하세요 너무 당연한 질문이지만 그래도 여쭈어보고싶어서 여기에 질문드립니다   지금 연구종료기간이 얼마 남지않았는데, 이제서야 동물모델이 확립이 되었어요. 그래서 한시라도 빨리 데이터를 내야하는데요, 이번 주에 사용할 수 있는 쥐를 다 사용하고 내일에야 새로운 쥐가 반입이 되는데요, 주수는 실험주수에 사용해도 되는 주령이긴합니다..   그런데 항상 배워오고 어딜가나 항상 들었던 권고사항이 동물반입 후 1주일 동안 안정화를 시켜주라고 하셨는데, 혹시 이게 .. 꼭 지켜야 하는 것일까요? 바로 실험에 사용하면 안되는 것일까요?   바보 같은 질문이지만 여쭈어봅니다.. 엉엉

식품관련 저널 중 기관의 동물실험 승인이 필요하지 않은 저널이 있을까요?  

안녕하세요, 8주령 마우스에게 0.5 mg b-estradiol을 0.1 ml sesame oil에 녹여 복강주사 투여하였습니다. 투여한 날 체중은 17~19 g이었는데, 이틀이 지난 오늘 체중을 측정하니 15~16 g으로 줄었더라고요... 그 이유와 실험에 미칠 영향이 궁금하여 질문 남기게 되었습니다. 제가 복강주사 시 보정을 너무 세게해서 마우스들이 스트레스를 받았나 싶은데, 몇 마리만 그런것이 아니라 쉰마리 넘게 모두 체중이 감소하였습니다 ㅠ 예비 실험때는 이런 적이 없어 당황스럽네요.. 아니면 복강주사를 잘 못 하여 복강이 아니라 복막으로 물질이 투여된 것인가 싶기도 하고요. (이 경우 estradiol이 제대로 작용할까 걱정스럽기도 합니다)

안녕하세요. 마우스(B6D2F1) 난자를 정기적으로 공급받을 수 있는 회사나 연구소를 찾고 있습니다. 아시는 분께 답변 부탁드립니다. 감사합니다.

조카가 수의학과를 가고 싶어해서요   수의학과 졸업하고 동물실험에 참여하면   SPF같은 사육실에서 동물을 사육하거나 다루고 전반적인 동물의 상태 체크를 하나요   아니면 같이 동물실험에 참여 하여 실험과 상태 관찰 후 안락사까지 모든 실험을 같이 하게 되나요?   답변해주시면 감사드릴게요^^

안녕하세요 현재 B6 mouse로 tail vein injection을 연습하고 있는 학생입니다.  일단은 그냥 PBS로 주입하는 1주일동안 연습을 하고 있는데 아직 성공을 못했습니다. 제대로 주입이 되면 용액이 쑥들어간다는데 아직 그런느낌을 못받았습니다.  제가 아직 쥐 몸통은 못만지고 꼬리만 만질 수 있어서 restrainer에 쥐를 고정시키고 연습을 하고 있는데 지금 문제점이 꼬리에 바늘을 대면 쥐가 움찔거리거나 몸부림쳐서 그때 바늘이 빠져버리거나 움직여서 제대로 주입이 안되는 것 같습니다.  움찔거리는게 몇 번 반복되다보면 아예 쥐가 몸을 돌려서 자기 꼬리를 restrainer 안으로 넣고 들어가려고 하더라구요. 또 이런 경험이 여러번 반복되다보니 쥐가 restrainer로 들어가지 않으려고 해서 restrainer에 넣는 것도 힘든 것 같습니다...ㅠㅠ 제가 질문 드리고 싶은 것은 1. 쥐가 restrainer안에서 몸을 돌리지 못하게 하려면 더 tight하게 고정시켜야 하나요? 어느정도까지 tight하게 해도 되는지 잘 모르겠습니다. 2. 제가 지금 restrainer에 넣을때 그냥 꼬리를 잡고 좀 세게 당겨서 넣는데 이렇게 해도 괜찮은건가요? 들어갈때마다 쥐가 찍 거리는데 제대로 하고 있는건지 모르겠습니다...  

초파리 관련 실험 설계중인 고등학생입니다. 알에서 깨어난 초파리를 암수 따로 바이알에 담을 때, 마취시킨 상태로 옮겨야겠죠...? 다름이 아니라 제가 설계중인 실험이 초파리의 단기 기억력을 측정해 비교하는 실험이라 마취 과정에서 단기 기억력에 영향을 미칠까봐 우려가 됩니다. 초파리 알이 담긴 병에 마취제를 뿌려 깨어난 초파리를 다른 병으로 옮기는 과정을 반복하면, 나중에 깨어나는 초파리는 마취제의 영향을 여러 번 받아 단기 기억력이 훼손될까요..? 어떻게 해야 할까요?ㅠㅠ 도움의 손길을 정말 정말 간절히 기다리고 있습니다...

안녕하세요! 사회적 고립이 초파리의 단기 기억력에 미치는 영향을 주제로 실험을 설계중인 고등학생입니다. 초파리를 수컷 또는 암컷 한 종류만 사서 바이알에 혼자 둔 개체와 다른 초파리들과 함께 둔 개체의 단기 기억력을 비교하려 합니다. 암수를 교배시키지 않고 배송된 초파리를 그대로 실험에 사용하면 배송된 당시의 초파리의 수명이 달라변인 통제가 제대로 되기 어려울까요...? 만약 교배시켜 그 자손을 실험에 이용해야 한다면 자손과 부모는 어떻게 구분하며, 초파리를 옮길 때에는 어떤 기구를 이용해야 다치지 않게 옮길 수 있나요?  연구가 처음이라 어려운 점이 많네요ㅠㅠ 도움 부탁드립니다! :) 감사합니다

안녕하세요 자체 제조한 식이를 공급하여 SD rat을 사육하고 있습니다. 사육한지 2주가 지난 시점에 사육동물 중 한마리의 눈가에 이상이 발견되었습니다. 바로 아래 사진과 같이 눈가 주변이 빨갛게 변하고 주변 털이 빠져 있었습니다.                                                                            다행히 시간 경과에 따라 치유가 되기 시작하고 현재는 딱지 정도만 남아 있습니다. 이에 자해에 의한 상처라고 생각했습니다. 하지만, 3주가 지난 오늘, 다른 2~3마리의 쥐들에서도 아래와 같은 증상을 발견했습니다.  이에, 식이제조시 미량영양소(비타민 및 무기질)가 고루게 분산되지 않아 발생한 일종의 결핍증으로 추정하고 있습니다. 물론, 이를 반영하여 식이를 다시 제조할 예정이지만, 이와 같은 현상에 대해 여러분들의 고견을 구하고자 문의를 하게되었습니다. 이와 유사한 경험이 있거나 이와 같은 현상이 발생하게 된 원인에 관하여 의견이 있으신 분들은 의견 공유를 간절히 부탁 드립니다. 감사합니다.