안녕하세요. 조직배양 호르몬 스탁 솔루션 제조중에 있습니다. 2,4-D 합성옥신을 사용하려고 스탁솔루션 제조중인데 50mg 2,4-D에 4-5ml 90%에탄올 넣고 살짝 따스하게 해서 결정이 다 녹은것을 확인했습니다. 그리고 급하게 온라인에서 산 순수수로 50ml로 최종 솔루션을 제조했는데, 냉장보관 하고 다음날 보니 결정이 생겨서 벽면에 붙어 있네요 ㅠㅠ   혹시 왜그런지 알 수 있을까요 구글링해봐도 제조방법만 나와있습니다ㅠㅠ 

안녕하세요. 다름이 아니라 BC균들 접종 후 온도는 25도로 맞추어서 하고 있지만  습도는 어느 정도가 적정한지 아직 잘 모르겠습니다. 다른 분들은 어떤 방식으로 하는지 알려주새요ㅠㅠ

어떤 키트에 Reconstitute at 0.2 mg/mL in sterile,deionized water. Deionizd water. 라고 되어있습니다. 키트 용량은 100 ug이고 전량 다 사용할 시 0.5 ml 멸균증류수에 현탁하여 사용하면 되는게 맞나요?

식물 조직배양 실험을 진행 중인데, 실험을 진행하다보니 식물 조직의 생존률이 너무 낮아 소독 방법을 수정해가면서 진행하고 있습니다 하지만 소독방법에 문제가 있기 보다는 식물조직이 배양되고 있는 밀봉된  petri dish의 습도가 너무 낮아 시료가 잘 생장하지 못하는 것 같다는 피드백을 받았습니다. 혹시 배양하고 있는 petri dish 내의 습도를 올릴 수 있는 방법이 있을까요? 혹은 배지의 특정 조성 성분을 조절하면 밀봉된 petri dish 내의 습도를 올릴 수 있을까요?? 질문 읽어주셔서 감사드립니다

African violet 잎을 배지에서 배양하려고 준비하는 과정에서 잎을 에탄올로 소독 시 너무 오래하면 탄력을 잃는다고 하더라구요 에탄올의 어떤 성분이 잎의 탄력을 잃게 만드는 것인가요?   그리고 배양 시 작은 잎이 큰 잎보다 활력이 더 좋다는데 그 이유도 알려주시면 감사하겠습니다.

연구 중인 균이 있습니다    일반적인 배지로는 자라지가 않아서 관련 논문을 찾아보던 중   MYA 배지에서는 자라는 걸로 나와 있더군요   근데 조건이 (15% g/L malt extract, 5% g/L yeast extract, and 15% g/L Agar)   이런 식으로 %로 나옵니다 그냥 g로 나오지 않고 %로 나오니   헷갈려서 도움이 필요합니다

조직배양 초보 대학원생입니다. ㅜㅜ 위기종 식물(목본)의 기내배양및 증식 용역과제를 수행하고 있는데, 소독과정을 거친 후 nodal segments를 2cm크기로 잘라 배지에 치상하면, 어김없이 오염이 납니다. ㅜㅜ  이 종의 특징이 줄기와 잎 뒷면에 강모가 밀생하고 있는건데요, 줄기 부분의 오염을 줄일려면 어떻게 해야 할까요? tween20 처리한뒤 5시간동안 흐르는 물에 헹군뒤, 70% 에틸알코올처리, 3% 차아염소산나트륨 처리까지 충분히 한것 같은데, 역시 오염이 나고 있습니다. 애초부터 식물 재료를 다듬을때 메스나 면도칼로 긁어 털을 없애거나 박피과정을 거치는게  정답일까요? 또 정아나 측아 부분에도 털이 너무 많아서 잘라내야 할거 같은데, 식물의 신초형성에 큰영향을 줄까요? ㅠㅠ

식물조직배양에서 벼를 배양할 때 N6D배지에서 배양할려고합니다. N6D배지의 어떤 성분 때문에 벼를 N6D배지에 배양해야 하나요?

원형질체 분리 실험을 simple method for the isolation of plant protoplasts (ias.ac.in) 위 논문을 참고해서 진행하려 합니다. 원형질체 배양을 위해 p6에 있는 MS salts without NH4NO3가 필요하며, 구성요소는 KNO3 1900 | L-Glutamine 100 Casein hydrolysate 20 | myo-Inositol 2000 Glycine 2  | Nicotinic acid 0.5 | L-serine 0.1 으로 나타나 있습니다. 그런데 제가 찾은 가장 비슷한 구성요소를 가진 MS는 NH4NO3가 들어가 있으며 이것이 없는 MS는 찾기 어려웠습니다. Murashige & Skoog Medium (w/ Vitamins)-M4531 NH4NO3가 들어간 제가 찾은 것은 이것인데요.   위 제품에서 NH4NO3를 따로 분리하는 방법이 있는지,  아니면 위 경우에 사용할 수 있는 제품이 있는지 궁금합니다. 그리고 MS는 정확히 무엇인지도 궁금합니다

일반 고등학교 재학중인 3학년 학생입니다. 학교에서 실험 주제를 정해서, 준비를 하고 있는데 학교에 이런 실험을 해본 적이 있는 선생님이 없으시고, 과정이 쉽지 않아서 질문 드립니다. 원형질체를 분리하여 직접 배양 해보고, 이것이 성공하면, 직접 세포융합도 시도하려 합니다. 원형질체를 분리하는 재료는 A simple method for the isolation of plant protoplasts (ias.ac.in) 위 논문을 참고하였습니다. 첫번째 질문은, 위 논문 4p에 원형질체를 분리시키는 재료를 참고했는데, 농도만 표시되어 있고 L가 표시가 안되있어서 재료 준비할때 어려움이 있을 것 같습니다. 이럴때는 1L로 기준을 맞추면 되나요?   두번째 질문은, 위 실험에서 토마토 잎에 분해를 위해 Onozuka사의 Cellulase R-10을 처리했는데, 이것을 aladdin사의 Cellulase from Aspergillus niger로 바꿔서 사용해도 되나요? 추가적으로 논문에서 사용된 Novo사의 효소는 구할수 없고, Onozuka사의 효소는 학교에 요청하기에는 가격이 비싸서그런데, 대체품은 없나요?   세번째 질문은, 6p에서 Media에 기본적으로 MS salts가 들어가는 것을 확인하여, 성분이 가장 비슷한 Murashige & Skoog Medium (w/ Vitamins)-M4531 제품을 찾았습니다. 그런데 실험 설명에는 KH4NO3가 없어야 한다고 나와있는데, 제가 찾은 MS에는 전부 이것이 들어있었습니다. KH4NO3를 따로 제거하여 써야 하는 것인지, 그러면 그 방법은 무엇인지 혹은, 다른 MS를 사용해야 한다면 어떤 것을 사용해야 하는지 궁금합니다.   네번째 마지막으로, 원형질체를 만들고 세포합성을 하는 논문 중 한글 논문이나 제가 참고할 만한 논문이 있나요?? 혹은 다른 간편하고 상대적으로 저렴한 재료로 실험한 논문이 있을까요?

NB 배지를 이용하여 벼 종자에서 캘러스를 유도하려고 하는데 벼 종자를 배지로 옮기면 항상 벼 종자 주변이 세균으로 오염되어 첫번째 단계에서 계속 멈춰 있습니다. NB배지, 살균 증류수 전부 autoclave를 통해 멸균하고 클린 벤치에서 작업합니다. 사용하는 핀셋, 유리병 전부 autoclave 돌린 후 클린벤치에서 화염 멸균하여 사용합니다. 쌀 종자는 70% ethanol로 일 분, 1.5% sodium hypochlorite와 tween 20 혹은 triton X-100으로 30분 살균하고 증류수로 washing 후 종자를 배지에 놓습니다. 다만 마지막에 washing하는 증류수가 마르지 않은 채로 배지에 올립니다. 교수님도 원래는 filter paper같은 걸로 수분을 날리고 배지로 옮긴다고는 하셨는데 그냥 washing하고 바로 옮기라고 하셧습니다. 배지는 쌀 종자를 옮기지 않은 것은 일주일 지나도 세균 오염이 없는데 종자를 옮기면 계속 오염이 생깁니다. 제 짧은 식견으로는 세균으로 오염되는 영역이 항상 멸균 증류수가 퍼진 영역인데 멸균 증류수가 문제일까요? 

안녕하세요 식물체를 배양하고 있는데 배양중에 배지의 ph가 너무 많이 떨어지네요 ms배지를 mes 혼합 배지를 써보려고 하는데 mes 첨가가 배양중 배지의 ph 완충에 효과가 있는지 경험을 듣고 싶습니다 선배님들의 조언 부탁드립니다

안토시아닌이 인체 중금속 제거에 도움이 된다는 주제로 탐구를 하고 있는데 무슨 원리인지가 안 나와있네요ㅠㅠㅠ 그냥 중금속 제거 특성도 있다. 이렇게만 나오니까... 원리는 없나요?

애기장대를 구매하려고 하는데 구입처 좀 알고 싶습니다. ABRC , NASC는 학교나 연구실만 구입 가능하다고 해서요 일반인도 애기장대를 구매할 수 있는 곳이 있을까요? 도움 답변 부탁드리겠습니다. 감사합니다.

MS배지를 이용해 캘러스유도 및 조직배양 실험을 진행하려고 하는데, 4-5일차 부터 흰색, 주황색 등의 곰팡이로 추측되는 것들이 생성되는 것 같습니다. 세척은 EtOH와 락스 10-15%로 희석해 진행하였습니다. 식물체 조직을 옮기지 않은 Control과 멸균한 filter paper를 식물체 대신 올린 배지에서는 곰팡이가 생기지 않는 것으로 보아 식물체 내부의 문제 떄문에 발생하는 것으로 추측하고 있습니다. 첨부한 사진이 곰팡이가 맞는지, 곰팡이가 아니라면 원인이 무엇인지, 혹시나 내부 균이 맞다면 제거하는 효과적인 방법 등이 있을까요? 질문드립니다!

ginsenoside Rg5를 분석하려고 하는데,,, 너무 급하여 올림니다. 표준품을 구하려 하는데 국내/해외 재고를 전혀 찾을 수 없습니다.  Sigma-aldrich 제품 ginsenoside Rg5 여야 하는데 (Product number 43016)  새것을 갖고 계신 분 있으시면 도움을 부탁드리겠습니다. 

시금치 색소 추출 TLC 하려 합니다 전개액을 만들어야 하는데 실험실에 석유 에테르가 없어요.. 대체할만한 시약 없을까요?

안녕하세요 고등학교 동아리 활동으로 제가 한약재에서 추출물을 뽑아내어 비타민c 농도별 항산화효과를 확인하는 실험을 하려고 합니다.  작약, 당귀, 녹차, 석류, 계피, 감초같은 약초들을 추출물(액체)를 뽑아서 실험을 해고 싶은데 논문들을 찾아보니 학교에서 할 수 있는 정도의 난이도도 아니었고, 시중에 판매하는 것들은 화장품 만드는데 사용하는 게 많더라고요. 알코올추출방법, 물추출방법 등 많던데 고등학생이 할 수 있는 정도의 난이도로 약초에 있는 성분을 최대한 건드리지 않고 추출물을 만들어낼 수 있는 방법에는 무엇이 있나요? 답변 부탁드리겠습니다. 감사합니다!   +친구는 그냥 말린 약재를 사서 끓이고 냉각시키고만 반복하면 된다는데 이렇게 해도 되는지도 추가로 묻고 싶습니다!

버섯(자실체)에 관한 질문입니다 제가 본 영상에서 자실체에 대해 설명한 내용이 있었는데 일부가 잘 이해가 되지 않아 여기에 질문 드립니다.  ‘자실체의 아랫부분에서 포자를 형성하게 되는데, 포자라고 부르는 작은 반수성 세포가 버섯 내에서 생성이 되고, 결과적으로 포자를 밖으로 내보내는 역할을 하게 된다.’ 라는 내용에서 포자를 생성한다는 건 이해가 되는데 ‘결론적으로 포자를 밖으로 내보낸다’는 내용이 잘 이해가 되지 않습니다. 이 내용에 관해 자세히 아시는 분 답변 부탁드립니다.

Flavonoid 함량이 (5.06 mg QE/g dw)인 물질에 대하여  100ml을 만들었을때 이때의 flavonoid 함량을 구할수있나요?