agrobacterium을 이용해서 tabacco의 형질전환을 하려고 하는데요 처음에 E.coli에서 목적유전자를 많이 증식시키고 이 유전자를 agrobacterium에 전달하려고 하는데 E.coli에서 agrobacterium으로 유전자가 어떻게 전달되는지 원리에 대해 알 수 있을까요? E.coli의 plasmid에 목적유전자가 들어있으면 이게 agrobacterium에 전달되는 과정에 대해 알고 싶습니다!

안녕하세요 tabacoo형질전환에 대한 실험을 하려고 합니다. 아직 학부생이라 이론에 대해 더 알아야 해서 질문합니다. E.coli를 이용해서 agrobacterium의 형질전환을 한 후 tabacco의 형질전환을 할 예정인데 제가 이미 목적유전자가 삽입된 E.coli를 갖고 있습니다. agrobacterium은 EHA105를 사용할 예정입니다. 이 경우 E.coli에 삽입된 벡터를 그대로 agrobacterium에 넣어주면 되는 것일까요? 따로 벡터가 필요할까요? 저는 E.coli의 벡터에서 목적 유전자를 빼고 난 후 따로 준비한 벡터에 다시 삽입해서 agrobacterium에 넣어주는 것으로 알고 있었습니다.  답변해주시면 정말 감사하겠습니다!

양파뿌리의 체세포분열을 실시간으로 관찰하려고 합니다.   양파뿌리를 채취하여 고정/해리 없이 염색만 해서 관찰하려는데요, 아세트올세인으로 염색하면 아세트산 때문에 체세포 분열을 방해하지 않을까 싶습니다.   혹시 체세포 분열을 방해하지 않는 염색약이 있을까요?

transgenic plant(T) T1에 대한 전기영동(선발을 위한) 결과 single band가 나와야 한다 하는데 이유가 궁금합니다. 또한 hetero시 전기영동 결과가 2개의 band로 나타나는데 염색체 관련인지 아니면 다른 이유인지 궁금합니다. (멘델의 유전 법칙, hetero, homo, 염색체 등 관련)

학교 동아리 활동으로 콩에서 카나바닌을 추출하여 항균효과를 관찰하는 실험을 해볼까 합니다. 그런데 카나바닌을 추출하는 과정을 잘 모르겠습니다. 카나바닌을 추출할때 필요한 장비와 방법을 알 수 있으면 좋을것 같습니다

화학물질 비스페놀 A가 초파리에게 미치는 영향에 대해 실험을 하고 있는 고등학생입니다. 이 과정 속 초파리를 비스페놀에 노출시켰을 때 초파리가 죽지 않을 정도의 농도를 계산하려고 하는데 적정 농도를 찾지 못해 실험에 난관을 겪고 있습니다. 초파리가 복용할 수 있는 적정 비스페놀 농도 계산법이 궁금합니다.  

안녕하세요. 현재 석사과정중인 학생입니다. 현재 진행하고 있는 연구가 새싹삼(새싹인삼)과 β-glucosidase 활성이 있는 유산균을 발효시켰을 때 고분자 진세노사이드에서 저분자 진세노사이드로 전환되는지를 확인하고 있습니다. 유산균의 β-glucosidase활성은 Esculin법으로 배지의 색 변화를 확인하였고, 조효소제를 제조하여 Ginsenoside Rb1의 전환을 확인하려고 하는데 조효소제 제조법에서 막히고 있습니다.. 여러 논문을 찾아보아도 대부분 비슷하게 서술되어 있어 막막합니다. 혹시 작은 도움이라도 주실 수 있으신 분 계시면 아주 작은 도움이라도 부탁드립니다. 감사합니다. 

안녕하세요, 궁금한게 생겨 문의드립니다.  다름이 아니라 공부를 하던 도중 애기장대에서 null mutant를 만드는 과정에서 T-DNA inserton을 통해 null mutant를 유기했다는 내용이 나왔는데, 제가 아는 지식으로는 식물체에 T-DNA가 삽입될때 random하게 chromosome에 삽입되어 mutant를 얻는 것으로 알고 있습니다.(공부가 부족하여 이 부분이 정확하지 않을 수 있습니다) 혹시 특정 gene의 기능을 knock-out시키기 위해서 T-DNA가 삽입될때 특정 gene에 targeting하여 삽입하도록 하는 기술이 있는지 여쭤보고자 문의 남깁니다 감사합니다.

고등학교 1학년 학생입니다. 나무를 관찰하다가 여름인데도 불구하고 꽃이 진 나무들은 가장자리부터 잎과 줄기가 붉게 변하는 것을 알게 되었습니다. 제가 관찰한 나무는 매화와 진달래입니다. 나무의 색소가 생존원리와 어떤 연관이 있어서 꽃이 진 후 잎과 줄기의 색이 변하는 것인지, 왜 가장자리부터 그런 변화가 생긴 것인지 궁금합니다.

‘사과 갈변 억제’를 주제로 실험을 하게 되었는데요. 그 과정에서 산성 물질이 효과가 있다는 글을 보고 반대로 “염기성 물질은 갈변을 촉진 시킬까?” 하는 의문점이 들어 수산화나트륨을 사용하여 실험을 진행 하였습니다. 사과에 용액을 묻힌 후 비닐랩에 올려두고 즉시/10분 뒤/24시간 뒤에 관찰했구요 사진처럼 사과가 빨갛게 변한 원인을 무엇으로 보는 게 맞을까요? 갈변이 되었다고 하기엔 애매해서요.

안녕하세요 오늘 arabidopsis floral dip 을 했는데, 실수로 5% sucrose를 만들어야 했는데, 0.5%로 만들었습니다. 디핑은 끝났고 아래 링크의 논문을 찾아보니까 0.5%~5%는 효율에 큰 차이가 없다고 하는데, 걱정이 돼서요ㅜㅜ https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1046/j.1365-313x.1998.00343.x 경험자 분들의 조언 부탁드립니다.  

안녕하세요, 저는 실험이 초보인 대학원생입니다. 한가지 질문을 드릴려고 하는데요, TMHMM2.0 version 으로 transmembrane prediction을 했는데요, 피겨를 첨부해 드립니다. 이 피겨가 어떤것을 의미하는 지 궁금해서 고수님들께 여쭤보는 바 입니다. 그리고 만약에 저 피겨속 빨간색부분이 outside위로 넘어간다면 그것 또한 어떤것을 의미하는지 알고싶습니다. 답변 부탁드립니다. 감사합니다~~~

현재 실험실 생활중인 학생입니다.   최근 cloning을 하고 있는데 transformation을 해도 colony가 나오지 않아 고생중입니다. 간간히 colony가 떠도 gene specific primer와 vector specific primer로 PCR 해보면 대부분 아니구요. 한번은 gene이 삽입된 것으로 확인돼서 plasmid를 추출해서 gel loading으로 확인 했는데, plasmid size가 다르더군요...   제가 생각하기엔 ligation 단계에서 문제가 있는가 의심돼서, ligation product를 PCR로 확인해보려 합니다. 그런데 제가 AP 처리를 한 vector를 사용했는데, 이게 PCR시에 문제가 되진 않을까요?   AP 처리한 vector를 ligation 하면 중간에 nick이 생긴다고 알고 있어서 불안한 마음에 질문 드립니다.

fore ground selection에서 flanking marker사용이 중요하다고 하는데 왜 그런가요? 또 어떤 마커시스템이 가장 유리한지 알고 싶습니다.  

안녕하세요. yeast two hybrid 실험을 하고 있는 학부연구생 1년차입니다. 다름이 아니라 takara 시스템을 이용하는데, yeast two hybrid mating 하기 전에 autoactivation과 toxicity 검사를 진행하는데 toxicity 검사는 정상적으로 독성이 없음을 확인했는데 autoactivation 결과에서 SD(Trp-)/X/A 배지에서 콜로니가 뜨면 AUTOACTIVATION이 일어난다는 것인데, 제가 하고있는 유전자 3개다 콜로니가 떳습니다. 근데 이상한 점은 콜로니가 모두다 Yeast가 아니라 다른게 자란 것 같습니다. 이스트 냄새도 안나고하는데 이때 이 결과를 어떻게 받아드리면 될까요? autoactivation이 안일어났다고 봐도 되는건가요?   또 다일루션할때 SD(TRP-)/X/A media 배지로 희석했는데 SD(trp-)배지로 희석해야되나요?

안녕하세요 대학교에서 학부연구생으로 일하고있는 연구생입니다. 다름이 아니라 Yeast two hybrid를 진행할때 x-alpha-gal를 사용하는데 250mg 의 x-alpha-gal이 왔는데 이것을 20mg/ml로 DMF(dimethlyformide)로 희석해야하는데 몇 ml를 넣야하는지 계산좀 도와주세여 ㅜㅜ 제가계산한거는 12.5ml인데 아닌것 같아서요 ㅜㅜ