rna 간섭에 대해 공부하며 RNA 간섭이 질병 치료 뿐만 아니라 유전자형과 표현형의 관계를 분석하는 데도 쓰일 수 있지 않을까 생각을 떠올렸는데 실제로 그게 가능한가요? RNA 간섭을 활용하면 특정 유전자를 억제할 수 있고, 어떤 표현형 변화가 나타나는지를 분석하면 유전자형과 표현형의 관계를 분석하는 데 쓰일 수 있지 않나요? 실제로 rna 간섭의 활용

안녕하십니까, 석박통합 3학기차 대학원생입니다. 현재 연구실에서 brain T cell을 FACS로 분석하는 실험을 세팅 중에 있습니다. 샘플링은 collagenase와 DNase를 이용한 enzymatic digestion을 하고 있고 사진과 같은 gating을 하고 있습니다. 문제는 brain에서 CD4의 population이 나뉘지 않는 것입니다. 사

실험실에 들어온 지 얼마 되지 않은 실험 초보입니다. transfer 과정이 끝나고 membrane을 ponceau S 용액에 염색한 뒤에 1차로 대략적으로 washing을 진행한 뒤에 cutting을 먼저 하고나서 칸이 나눠진 통에 담아 TBST로 5분 간 3회 2차 세척을 진행합니다. 이때 1차 washing에서 수돗물을 써도 상관이 없다고 배웠는데 정

이번에 Gibson assembly를 통해서 pcDNA에 gene을 집어넣었습니다. 이후 Transformation - Colony PCR을 통한 밴드 확인 - target band가 나온 colony를 small culture - plasmid mini prep(sequencing) - Transformation - colony 딴 후 prep - seq

HepG2 고 어제 계대했는데 저런 실같은게 보이네요.. 곰팡이 오염일까요? 일단 배지 다 새로만들고 인큐베이터 청소하고 새로 풀 예정입니다.. 그럼 사라지겠죠?ㅜㅜ

연구실 인턴 초보 대학 학부생입니다. 최근에 qPCR용으로 RNA 추출을 위해서 트라이졸과 클로로폼을 다뤄야하는 실험을 하고 있는데 보통 다른 시약들은 튜브에 엘리퀏을 해놓고 원액병은 최대한 오염없이 보관하고 소분한 튜브를 해동해서 사용하는 식으로 하는데, 트라이졸과 클로로폼은 어떤식으로 보관하고 사용하는지 잘 모르겠어서 질문을 드립니다. 휘발성이 강하고

안녕하세요. DNA 추출에 관련한 실험을 하려고 합니다. 여건상 transilluminator이 없는 상황이라 실험이 DNA를 전기영동까지만 하는게 가능합니다. 혹시 연구소에 전기영동한 젤을 보내면 연구소 측에서 DNA band 확인 후 결과를 사진으로 받는게 가능할까요?

생물나라에서 침샘염색체 슬라이드를 시키면 초파리 침샘이 올려지고 염색과 고정 처리를 한 슬라이드가 오는건가요? 제품을 받으면 바로 관찰만 하면 되나요? 보관 방법과 기한이 궁금합니다. 기초적인 질문해서 죄송합니다.

안녕하세요 이번에 학교에서 pbmc담당 업무를 새로 맡게되었습니다. streck tube와 edta tube 각각 두개에 blood가 샘플로 들어옵니다. 두가지 모두 동일 조건 동일한 프로토콜에서 pbmc분리 실험을 진행하는데, 유독 streck 쪽에서 cell viability가 매우 낮게 나옵니다. 전자가 5-18%정도라면, 후자가 70-90%정도로 같

마늘,생강,녹차,프로폴리스로 천연물질 항생효과 확인 실험을 했습니다. 38도 24시간동안 항온기에서 배양했고, 대장균은 60mm배지에 0.1ml씩, 농도를 증류수를 섞어 원액,50%,25%,12.5%로 물질별로 나누어서 실험을 진행했습니다. 대장균과 배지는 생물나라에서 구매를 했고,배지 설명서에는 배양 성공시 녹색이나 금속 광택을 띠는 푸른 군체를 형성한다