3D Cell Culture 및 Simulated Microgravity 연구용 RPM 2.0 (YURI)
SIMULATED MICROGRAVITY PLATFORM
3D Cell Culture 및 Simulated Microgravity 연구용
YURI
RPM 2.0
Airbus 20년 검증 기술을 계승한 Random Positioning Machine.
지상 실험실에서 우주 미세중력 환경을 구현합니다.
10-3g 최소 중력 구현 | 0.9g 최대 중력 구현 | 60+ 글로벌 연구그룹 | 20+ 년 검증 기술 |
PRODUCT OVERVIEW
지상 실험실에서 구현하는 우주 미세중력 환경
YURI RPM 2.0은 두 개의 독립 짐벌 프레임을 통해 중력 벡터 방향을 무작위로 회전시켜, 생물학적 샘플에 지속적인 미세중력 환경을 제공하는 장비입니다. 기존 모델이 제로 중력(~0g) 구현에 집중했다면, RPM 2.0은 0g~1g 사이의 부분중력(partial gravity) 시뮬레이션까지 지원하는 차세대 플랫폼입니다.
Airbus Defence and Space Netherlands가 ESA를 위해 개발한 20년 이상의 검증 기술을 YURI가 인수하여 지속 발전시키고 있으며, NASA·ESA를 포함한 전 세계 60개 이상의 연구그룹이 활용 중입니다.
KEY FEATURES
주요 기능 및 특징
🔄 Pole Bias 방지 알고리즘 극편향을 방지하는 독자적 경로 알고리즘으로 균일한 미세중력 환경을 보장합니다. | 💻 전용 제어 소프트웨어 PC 기반 소프트웨어로 평균 g값 등 파라미터를 실시간 모니터링·제어합니다. |
🌡️ 인큐베이터 환경 완전 호환 온도·CO₂·습도 제어 환경에서 바로 사용 가능. 별도 시설 개조 불필요. | ☢️ 방사선 시설 운용 가능 방사선 시설에서도 운용 가능하여 복합 환경 연구에 최적화되어 있습니다. |
🔌 통합 인터페이스 전원과 통신 인터페이스가 하나로 통합되어 설치 및 운용이 간편합니다. | 🛰️ ISS 실험 연속성 국제우주정거장(ISS) 실험 전 사전검증 및 사후분석 플랫폼으로 활용됩니다. |
SPECIFICATIONS
제품 사양
| 중력 시뮬레이션 |
| 시뮬레이션 범위 | 10⁻³g ~ 0.9g |
| 동작 모드 | 미세중력(~0g) / 부분중력(0g~1g) |
| Pole Bias 방지 | 독자 경로 알고리즘 적용 |
| 운용 환경 |
| 인큐베이터 호환 | 온도 / CO₂ / 습도 제어 환경 지원 |
| 방사선 시설 | 운용 가능 |
| 연속 운전 | 24시간 연속 운전 지원 |
| 소프트웨어 & 인터페이스 |
| 제어 소프트웨어 | PC 전용 소프트웨어 포함 |
| 모니터링 | 실시간 파라미터 모니터링 |
| 연결 인터페이스 | 전원 + 통신 통합 제공 |
| 레퍼런스 |
| 주요 사용 기관 | NASA, ESA, 전 세계 60+ 연구그룹 |
| 기술 검증 기간 | 20년 이상 (Airbus 기술 계승) |
APPLICATIONS
주요 응용 연구 분야
🧫 세포 생물학 3D 세포 배양, 구형체(spheroid) 형성, 세포 분화·성장 메커니즘 연구 | 💊 암 연구 유방암·전립선암·갑상선암 세포의 3D 성장 및 전이 모델 연구 |
🦴 재생의학 / 조직공학 골세포·연골 조직 공학, 골다공증 모델링, 줄기세포 분화 연구 | 🌿 식물 생물학 식물의 중력 감지 메커니즘, 성장 방향성, 우주 농업 기초연구 |
PEER-REVIEWED REFERENCES
RPM 활용 연구 레퍼런스
YURI RPM을 활용한 동료심사 논문 목록입니다. 아래 버튼을 클릭하면 전체 목록을 확인하실 수 있습니다.
20+ 암 연구 | 10+ 재생의학 | 5+ 면역·혈관 | 40+ 총 논문 수 |
▼ 전체 레퍼런스 목록 보기
💊 암 연구 (Cancer Research)
- Bauer et al. (2017). Proteome analysis of human follicular thyroid cancer cells exposed to the random positioning machine. Int J Mol Sci, 18(3). DOI
- Buken et al. (2019). Morphological and Molecular Changes in Juvenile Normal Human Fibroblasts Exposed to Simulated Microgravity. Scientific Reports, 9(1). DOI
- Dietrichs et al. (2022). Three-Dimensional Growth of Prostate Cancer Cells Exposed to Simulated Microgravity. Front Cell Dev Biol, 10. DOI
- Grimm et al. (2022). The Fight against Cancer by Microgravity: The Multicellular Spheroid as a Metastasis Model. Int J Mol Sci, 23(6). DOI
- Hybel et al. (2020). Simulated microgravity influences VEGF, MAPK, and PAM signaling in prostate cancer cells. Int J Mol Sci, 21(4). DOI
- Kopp et al. (2016). Identifications of novel mechanisms in breast cancer cells involving duct-like multicellular spheroid formation after exposure to the Random Positioning Machine. Scientific Reports, 6. DOI
- Kopp et al. (2018). The role of NFκB in spheroid formation of human breast cancer cells cultured on the Random Positioning Machine. Scientific Reports, 8(1). DOI
- Melnik et al. (2023). Dexamethasone Selectively Inhibits Detachment of Metastatic Thyroid Cancer Cells during Random Positioning. Cancers, 15(6). DOI
- Melnik et al. (2020). Dexamethasone Inhibits Spheroid Formation of Thyroid Cancer Cells Exposed to Simulated Microgravity. Cells, 9(2). DOI
- Nassef et al. (2019). Short-term microgravity influences cell adhesion in human breast cancer cells. Int J Mol Sci, 20(22). DOI
- Riwaldt et al. (2015). The importance of caveolin-1 as key-regulator of three-dimensional growth in thyroid cancer cells. Int J Mol Sci, 16(12). DOI
- Riwaldt et al. (2016). Pathways regulating spheroid formation of human follicular thyroid cancer cells under simulated microgravity conditions. Int J Mol Sci, 17(4). DOI
- Sahana et al. (2023). Long-Term Simulation of Microgravity Induces Changes in Gene Expression in Breast Cancer Cells. Int J Mol Sci, 24(2). DOI
- Sahana et al. (2021). Alterations of Growth and Focal Adhesion Molecules in Human Breast Cancer Cells Exposed to the Random Positioning Machine. Front Cell Dev Biol, 9. DOI
- Wise et al. (2022). Prolonged Exposure to Simulated Microgravity Changes Release of Small Extracellular Vesicle in Breast Cancer Cells. Int J Mol Sci, 23(24). DOI
🦴 재생의학 / 조직공학 (Regenerative Medicine)
- Aleshcheva et al. (2013). Changes in morphology, gene expression and protein content in chondrocytes cultured on a random positioning machine. PLoS ONE, 8(11). DOI
- Cariati et al. (2023). Recombinant irisin prevents cell death and mineralization defects induced by random positioning machine exposure in primary cultures of human osteoblasts. Front Physiol, 14. DOI
- Cariati et al. (2022). Exposure to Random Positioning Machine Alters the Mineralization Process and PTX3 Expression in the SAOS-2 Cell Line. Life, 12(5). DOI
- Cariati et al. (2022). Role of Myostatin in Muscle Degeneration by Random Positioning Machine Exposure. Front Physiol, 13. DOI
- Mann et al. (2019). Changes in human foetal osteoblasts exposed to the random positioning machine and bone construct tissue engineering. Int J Mol Sci, 20(6). DOI
- Pardo et al. (2005). Simulated microgravity using the Random Positioning Machine inhibits differentiation and alters gene expression profiles of 2T3 preosteoblasts. Am J Physiol Cell Physiol, 288. DOI
- Ulbrich et al. (2014). The impact of simulated and real microgravity on bone cells and mesenchymal stem cells. BioMed Research International, 2014. DOI
- Wehland et al. (2020). Tissue engineering of cartilage using a random positioning machine. Int J Mol Sci, 21(24). DOI
🩸 혈관 / 면역 연구 (Vascular & Immunology)
- Calcagno et al. (2023). Simulated Microgravity Disrupts Nuclear Factor κB Signaling and Impairs Murine Dendritic Cell Phenotype and Function. Int J Mol Sci, 24(2). DOI
- Dittrich et al. (2018). Key proteins involved in spheroid formation and angiogenesis in endothelial cells after long-term exposure to simulated microgravity. Cell Physiol Biochem, 45(2). DOI
- ElGindi et al. (2022). 3D microenvironment attenuates simulated microgravity-mediated changes in T cell transcriptome. Cell Mol Life Sci, 79(9). DOI
- Infanger et al. (2006). Induction of three-dimensional assembly and increase in apoptosis of human endothelial cells by simulated microgravity. Apoptosis, 11(5). DOI
- Krüger et al. (2019). Growth of endothelial cells in space and in simulated microgravity. Cell Physiol Biochem, 52(5). DOI
- Radstake et al. (2023). The Effects of Combined Exposure to Simulated Microgravity, Ionizing Radiation, and Cortisol on the In Vitro Wound Healing Process. Cells, 12(2). DOI
⚙️ RPM 기술 / 방법론 (Methodology)
- Brungs et al. (2019). Validation of Random Positioning Versus Clinorotation Using a Macrophage Model System. Microgravity Sci Technol, 31(2). DOI
- Hauslage et al. (2017). Pyrocystis noctiluca represents an excellent bioassay for shear forces induced in ground-based microgravity simulators. NPJ Microgravity, 3. DOI
- Wuest et al. (2015). Simulated microgravity: critical review on the use of random positioning machines for mammalian cell culture. BioMed Research International, 2015. DOI
- Grimm et al. (2014). Growing tissues in real and simulated microgravity: New methods for tissue engineering. Tissue Eng Part B Rev, 20(6). DOI
- Svejgaard et al. (2015). Common effects on cancer cells exerted by a random positioning machine and a 2D clinostat. PLoS ONE, 10(8). DOI
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